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编号:11586002
温固化水凝胶负载骨髓基质干细胞修复兔关节骨软骨缺损的实验研究(2)
http://www.100md.com 2008年3月1日 王金明 章庆国 张 娇
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温固化水凝胶负载骨髓基质干细胞修复兔关节骨软骨缺损的实验研究
温固化水凝胶负载骨髓基质干细胞修复兔关节骨软骨缺损的实验研究

    参见附件(2251KB,4页)。

     1.2.5 结果检测:分别于术后4、8、12周空气栓塞处死动物,取材,行大体及组织学观察:①大体观察:膝关节活动情况,关节滑膜有无充血水肿,关节囊有无增厚粘连及关节面缺损修复的平整度及光泽度;②组织学检测:取材后10%福尔马林固定48h,5%硝酸脱钙液脱钙24h,冲洗、系列酒精脱水、石蜡包埋、5μm切片、HE 染色光镜观察

    1.2.6 统计学分析:参考Wakitani制定的组织学评分标准[5](表1),所有实验结果计量资料以x±s表示,采用SPSS11.5软件进行统计分析,α值取0.05。

    2结果

    2.1 功能评价:术后3天内,兔膝关节活动受限,活动较少。随后运动逐渐增加,屈曲姿态和跳跃动作逐渐正常,1周内恢复正常。

    2.2 大体形态观察:膝关节无红肿,关节囊无明显增生肥厚,无挛缩、粘连;关节液清亮。

    2.2.1 A组:术后4周,填充物与周围正常软骨分界清楚,大部分呈淡红色半透明,缺损填充物周边部见部分呈乳白色;填充物表面平整光滑,与周围正常软骨连接良好,高度基本一样或略微凹陷;触之微韧,与周围正常软骨能分离。术后8周,填充物与周围软骨分界不明显,呈乳白色,与正常软骨颜色接近,表面光滑,与周围软骨连接好,高度与周围软骨基本一致;触之质韧,与周围正常软骨不能分离。术后12周,填充物与周围正常软骨分界模糊,呈乳白色,填充物表面平整光滑,与周围软骨连接好,高度与周围软骨基本一致;触之质韧,与周围正常软骨基本一致,与周围正常软骨不能分离(图1)。

    2.2.2 B组:术后4周,填充物与周围正常软骨分界清楚,大部分呈半透明状,周边部见部分呈白色,填充物表面平整光滑,与周围正常软骨连接良好,高度基本一样或略微凹陷;触之微韧,与周围正常软骨能分离。术后8周,填充物与周围软骨分界不明显,呈白色,表面略粗糙,与周围软骨连接好,高度略微低于周围正常软骨;触之质韧,与周围正常软骨不能分离。术后12周,填充物与周围正常软骨分界不清楚,呈白色,填充物表面凹陷不平,与周围软骨连接好,高度略低于周围正常软骨;触之质硬,与周围正常软骨不能分离(图2)。

    2.2.3 C组:术后4周,缺损区由白色组织填充,可见血凝块甚者部分缺损区骨质裸露无组织覆盖,表面粗糙,与周围正常软骨连接不佳,高度低于周围正常软骨;触之软,与周围正常软骨能分离。术后8周,缺损区由白色组织填充,周边可见部分裸露骨质无组织覆盖,表面粗糙不平,高度低于周围软骨,触之质韧,与周围正常软骨不能分离。术后12周,缺损区由白色组织填充,周边可见部分裸露骨质无组织覆盖,表面粗糙不平,高度低于周围软骨,触之硬,与周围正常软骨不能分离(图3)。

    2.3组织学观察

    2.3.1 A组:术后4周,缺损填充区可见增殖的软骨细胞,细胞排列不规则,成簇生长,细胞形态较少,基质较少,表面可见部分纤维样组织,可见不连续的软骨下骨(图4)。术后8周,缺损填充区可见软骨细胞增多,基质较多,细胞周围可见典型的陷窝样结构,软骨下骨连续性好(图5)。术后12周,缺损填充区形态与周围正常软骨相似,细胞形态、排列,基质量接近周围正常软骨(图6)。

    2.3.2 B组:术后4周,缺损填充区主要被纤维样组织覆盖,可散在见软骨细胞,软骨下骨生成较少。术后8,12周,缺损填充区同样主要为纤维样组织覆盖,软骨下骨逐渐增厚与正常接近(图7)。

    2.3.3 C组:修复各个时期,缺损区均为纤维组织覆盖,无软骨细胞。软骨下骨逐渐增厚(图8)。

    2.4统计分析结果:A、B、C三组在4、8、12周时所采集的数据,以x±s表示(表2),采用SPSS11.5软件进行统计分析,对数据显著性检验采用两样本均数比较的t检验。P<0.05为差异显著。实验组(A组)和空白对照组相比在各个时期均有显著性差异(P<0.05 ),单纯材料组(B组)和空白对照组相比在各个时期无显著性差异(P>0.05)。

    3讨论

    成熟的关节软骨损伤后其自我修复的能力十分有限,一般认为直径小于3mm的缺损可得到部分或全部的修复,而直径大于4mm的缺损一般不能以透明软骨形式修复[6]。本实验设计了约直径4mm、深3mm的关节软骨缺损模型。

    软骨细胞培养扩增修复软骨缺损多有报道,但细胞获取及扩增均较困难[7],且软骨细胞修复软骨下骨效果不佳。BMSCs 能够根据微环境信号的指令分别分化为成骨细胞和软骨细胞, 适合于伴有软骨下骨损伤的软骨缺损修复。由于关节腔内的乏氧环境和关节液中各种细胞因子的作用, 促使骨髓BMSCs 向软骨细胞分化形成软骨组织。而缺损底部邻近髓腔, 较高的氧分压促使骨髓BMSCs 向成骨细胞转化形成骨小梁。软骨和骨小梁的形成有利于修复组织与邻近正常组织的结合。这样, 软骨层及软骨下层的骨缺损都能修复而形成正常的关节结构[8]。

    本实验所应用的聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 三嵌段共聚物具有良好的生物相容性和良好的生物降解性[9-10]。它最大的特点是浓度大于100g/L的水溶液都有一个凝胶化温度, 当温度低于凝胶化温度时, 粘度很低,为粘性流体, 温度超过凝胶化温度时, 粘度急剧增高, 变为凝胶。400g/L时凝胶化温度约为4℃。因此我们可在低温下将此材料和细胞混合后注射至缺损区,操作上有了极大的便利。本实验结果示聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 三嵌段共聚物与骨髓基质干细胞(BMSCs)复合物能以透明软骨方式修复关节软骨缺损,而单纯材料组和空白对照组则以纤维样组织修复缺损,不能以透明软骨方式修复。

    因此温固化水凝胶聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 在软骨组织工程中将有良好的应用前景。

    [参考文献]

    [1]O'Driscoll SW. The healing and regeneration of articular cartilage[J].J Bone Joint Surg (Am), 1998,80(12): 1795.

    [2]Minas T , Frcs M , Nehrer S. Current concepts in the treat-ment of articular cartilage defects [J]. Orthopedics, 1997, 20: 525-538.

    [3]Faulkner DM, Sutton ST, Hesford JD, et al. A new stable pluronic F68 gel carrier for antibiotics in contaminated wound treatment[J]. Am J Emerg Med,1997,15(3)∶20.

    [4]夏万饶.组织工程化组织形成的最佳细胞浓度和最佳形成时间的实验研究[J].中华修复重建外科杂志,1999,13(4):244-248.

    [5]Wakitani S , Goto T , Pineda SJ ,et al. Mesenchymal cell-based repair of large ,full - thickness defects of articular carticular cartilage[J]. J Bone Joint Surg (Am),1994,76:579-592.

    [6]Yang Y,Lu MA.Joint cartilage defect research progress that repair[J].Guangxi Yixue (Guangxi Med J) 2002,24(12):2027-2031

    [7]Brittberg M, Tallheden T, Sjogren JE, et al. Autologous chondrocytes used for articular cartilage repair [J]. Clin Ortho and Rel Res, 2001, 391: 337-348.

    [8]李 强, 孙正义, 王栓科, 等. 骨髓间充质干细胞复合脱钙骨基质修复兔膝关节全层软骨缺损的实验[J]. 第四军医大学学报, 2004,25(15):1375-1378.

    [9]李石保,杨维东,唐立辉,等.温固化水凝胶的制备和应用[J]. 第四军医大学学报,2001,22(4):306-308.

    [10]张艳, 柴岗, 刘伟, 等.组织工程软骨构建的临床初步研究[J]. 中国美容医学, 2005,14(5):530-531.

    [收稿日期]2007-12-15[修回日期]2008-03-10

    编辑/张惠娟

    注:“本文中所涉及到的图表、注解、公式等内容请以PDF格式阅读原文。”

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