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编号:10503538
脑缺氧诱导的大鼠大脑皮层神经元大电导NMDA受体通道开放
http://www.100md.com 《第三军医大学学报》 1999年第7期
     王中峰黎海蒂 万子兵 罗全生

    提 要 目的:研究缺氧对大鼠大脑皮层神经元NMDA受体通道的影响。方法:细胞贴附膜片箝记录法。结果:缺氧除显著增加35 pS和100 pS NMDA受体通道的开放概率外,记录到一种电导达258 pS的NMDA受体通道亚型开放,该通道至少有3种开放状态:长时间开放、短暂开放、长时间和短暂开放在同一膜片上出现。通道在整个记录过程中开放概率较低。结论:缺氧可诱导大鼠大脑皮层神经元出现一大电导NMDA受体通道开放,它可能在缺氧病理过程中起重要作用。

    关键词:缺氧 神经元 NMDA受体 离子通道 膜片箝技术 大鼠

    兴奋性氨基酸是哺乳类动物中枢神经系统内的主要兴奋性神经递质,N-甲基-D-天冬氨酸(N-methyl-D-aspartate,NMDA)受体是重要的兴奋性氨基酸受体,它形成阳离子选择性离子通道,即NMDA受体通道,介导广泛的生理和病理过程,包括兴奋性突触传递,突触可塑性和兴奋毒等[1~3]。NMDA通道复合体在结合了两分子的谷氨酸和两分子的甘氨酸后通道开放,产生阳离子的跨膜流动,其中以Ca2+为主[4~6]。通道开放呈多电导状态,其电导一般分为小电导和大电导两组[7]。作者在用膜片箝细胞贴附结构研究缺氧状态下大鼠大脑皮层神经元NMDA受体通道特性时,发现缺氧诱导的大电导NMDA受体通道亚型开放,并对其单通道特性进行了初步分析。
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    1 材料与方法

    1.1 大鼠大脑皮层神经元分离

    参照文献[8]进行,将2~4周龄的Wistar大鼠断头取脑,分离脑皮层,并切成400~500 μm的冠状脑片,在通混合氧气(95%O2+5%CO2)的人工脑脊液(成分mmol.L-1:NaCl 126,KCl 5, NaH2PO4 1.25, NaHCO3 26, CaCl2 2,MgSO42,葡萄糖10,pH7.2)中孵育30min,后在含0.1%胰蛋白酶的2ml人工脑脊液中消化30min。用尖端火抛光的Pasteur吸管吹打,使组织分散。静置10 min后吸取上清液,滴加于事先涂有多聚赖氨酸的盖玻片上使细胞贴壁。加入浴液即可进行记录。分离过程在室温(23±1)°C下进行。
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    1.2 试剂

    胰蛋白酶,多聚赖氨酸,NMDA和L-甘氨酸均为Sigma公司产品,其余均为国产分析纯。

    1.3 溶液及缺氧模型

    细胞浴液(mmol.L-1):NaCl 140,CsCl25, CaCl21.8, HEPES 10, TTX 0.001,葡萄糖10,pH7.2。电极液:NMDA 20 μmol.L-1,L-甘氨酸1 μmol.L-1,不含葡萄糖,其余同正常浴液,将贴附有细胞的盖玻片放入培养皿中,加入细胞浴液,记录通道的电活动作为对照。去除细胞浴液中的葡萄糖,通混合氮气(95%N2+5%CO2)饱和1 h以上(氧分压9.16 kPa,美国LI-1620血气分析仪)。将此液加入放置有细胞的培养皿中,建立细胞缺氧模型[9]
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    1.4 单通道记录

    采用膜片箝细胞贴附式结构记录通道电流[10]。用微电极拉制器(PP-83,Narishige, Japan)两步拉制微电极,电极尖端直径1~1.5 μm,经涂胶,热抛光和充灌电极液后,电极电阻4~6 MΩ。单通道电流经膜片箝放大器(CEZ-2200,Nihon Kohedn,Japan)放大,1 kHz低频滤波后,用Digidata 1200采集板和pClamp软件(6.02版,Axon Instrument,USA)将信号采入微机,用Fetchex程序不间断采样,采样频率20 kHz。细胞箝制电位-80 mV。所有实验在室温下进行(23~25°C)。

    2 结果

    在急性分离的大鼠大脑皮层神经元膜上,用细胞贴附式膜片箝记录结构,以NMDA和L-甘氨酸为激动剂,记录到的NMDA受体通道如图1所示,细胞箝制电位在-80 mV时,通道开放的电导值分别为10 pS(图1A,n=6),20 pS(图1B,n=8),35、50 pS(图1C,n=6)和100 pS(图1D,n=8)等。相应的电流水平分别为:(0.78±0.09)pA,(1.63±0.16)pA, (2.79±0.14)pA, (4.12±0.71)pA,(7.97±0.05)pA。各种电导水平的开放以短暂开放模式为主,其中10 pS通道既有短暂开放,也有长时间簇状(Burst)开放,在簇状开放中有短暂的关闭状态。
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    在缺氧状态下,NMDA受体通道被显著激活,在所记录的21个细胞膜片上,35 pS和100 pS通道最常见,其开放概率比正常情况下显著增加(见图2,四条曲线为不间断记录,另文分析)。有趣的是在9个膜片上记录出一种开放电流达(20.7±1.5)pA,通道电导达(258±18)pS的亚型,该通道的开放有3种状态:①长时间开放状态,可被短暂的关闭所中断,其开放可与50 pS之间相互转换,见图3A;②短暂的开放状态,通道呈高频率短暂开放,即开关状态快速转化,见图3B和3C;③长时间开放和短暂开放在同一细胞上相继出现,见图3D。分析通道的开关状态发现,大多数情况下,该通道开放直接由关闭状态转换而来,在簇状开放的过程中,可与其它电导水平转化后关闭。长时间开放状态的出现并不是连续不断的,而是在开放一次经历较长时间后才会再次出现,短暂开放则可重复出现。

    图1 缺氧状态下大鼠大脑皮层神经元NMDA受体通道258 pS单通道记录图 箝制电位-80 mV

    此外,在实验过程中还记录到一例更大电导的NMDA受体通道开放,电流达42.5 pA,电导值为532 pS。在此细胞膜片上,缺氧诱导的其它电导开放显著减少,仅见到100 pS通道的短暂少量开放。因仅此一例,故没有作进一步分析,见图4。
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    图2 缺氧状态下大鼠大脑皮层神经元NMDA受体通道532 pS单通道记录图 箝制电位-80 mV

    3 讨论

    本研究在急性分离的大鼠大脑皮层神经元膜上,用膜片箝单通道记录技术,研究缺氧对NMDA受体通道的影响,用20 μmol*L-1的NMDA和1 μmol*L-1的甘氨酸来激动NMDA受体,记录到多个电导水平的通道开放,包括小电导和大电导两大类,此与文献[7]报道的在海马神经元上记录结果基本一致。在缺氧状态下,NMDA受体通道开放概率显著增加,其中以大电导类的35 pS和100 pS为主,而非小电导通道亚型,由于大电导NMDA受体通道对Ca2+有选择性通透,故可导致Ca2+内流增加,参与胞内Ca2+聚集[11~13]。本实验记录到的电导达258 pS的NMDA受体通道亚型,是由缺氧诱导的,因为在正常浴液情况下,没有记录到此亚型的通道开放。在缺氧的过程中,其开放的概率不高,往往和其它亚型在同一膜片上诱发开放,而且可以和其它电导水平之间相互转换,但更多的是直接由关闭状态转化开放。出现此大电导开放的可能原因有:一是封接的膜片上有2个或更多的通道开放叠加所致;另一是新的亚型通道,而前一种可能性较小,因为所用的电极尖端直径较小,而且在正常情况下,没有观察到此电导水平的开放,因此,作者认为,这是由缺氧诱导的NMDA受体通道亚型开放,这种亚型通道的开放可能是加速胞内Ca2+增高的因素之一。由于在缺氧状态下胞内Ca2+聚集是导致细胞损伤的启动因素之一,因此,大电导NMDA受体通道的开放在缺氧细胞病理损伤中可能起有重要作用。但这还需要更多的实验来进一步证实。
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    *重庆市中青年科技专家基金资助项目

    **王中峰,男,34岁,讲师,博士,现为中国科学院上海生理研究所博士后 上海,200031

    作者单位:王中峰黎海蒂 万子兵 罗全生 第三军医大学基础医学部生理学教研室 重庆,400038

    参考文献

    1 Choi D W, Rothman S M. The role of glutamate neurotoxicity in hypoxic-ischemic neuronal death. Annu Rev Neurosci,1990,13:171

    2 Contantine-Paton M, Cline H T, Debski E. Patterned activity, synaptic convergence and NMDA receptor in develo-ping visual pathways.Annu Rev Neurosci,1990,13:129
, 百拇医药
    3 Bliss TVP,Collingridge G L. A synaptic model of memory:long-term potentiation in the hippocampus. Nature,1993,361(6407):31

    4 Clements J D, Westbrook G L. Activation kinetics reveal the number of glutamate and glycine bingding sites on the N-methyl-D-aspartate receptor. Neuron,1991,7(4):605

    5 Kohr G, Koninck Y D, Mody I. Properties of NMDA receptor channels in neurons acutely isolated from epileptic(kindled) rats. J Neurosci,1993,13(8):3612
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    6 高天明,邹 飞,陈培熹.大脑皮层神经元NMDA受体的单通道特性.生理学报,1995,47(2):133

    7 Jahr C E, Stevens C F. Glutamate activates multiple single channel conductances in hippocampal neurons.Nature,1987,325(5):522

    8 唐向东,佟振清,杨文俊.一种改进的适用膜片箝记录的急性神经元分离方法.生理学通报,1994,11(1):60

    9 Harata N, Wu J, Ishibashi H, et al. Run-down of the GABAA response under experimental ischemia in acutely dissociated CA1 pyramidal neurones of the rat. J Physiol,1997,500:673
, 百拇医药
    10 Hamill O P, Marty A, Neher E, et al. Improved patch-clamp technique for high-resolution current recording from cell and cell-free membrane patches. Pflugers Arch,1981,391(1):85

    11 Salinska E, Pluta R, Puka M, et al. Blockade of N-methyl-D-aspartate-sensitive excitatory amino acid receptors with 2-amino-5-phosphovalerate reduces ischemia-evoked calcium redistribution in rabbit hippocampus. Exp Neurol,1991,112(1):89

    12 Xia Y X, Zacharias E, Hoff P, et al. Ion channel involvement in anoxic depolarization induced by cardiac arrest in rat brain. J Cereb Blood Fluid Metab,1995,15(4):587

    13 Mitani A, Yanase H, Sakai K, et al. Origin of intracellular Ca2+ elevation induced by in vitro ischemia-like condition in hippocampal slices. Brain Res,1993,601(1):103, 百拇医药(王中峰黎海蒂 万子兵 罗全生)