大鼠血管内膜损伤模型的建立
【文献标识码】 B 【文章编号】 1606-8106(2003)13-1950-01
血管内膜损伤，是人类多种疾病发生的直接或间接原因，可致机体发生动脉粥样硬化、血栓、血管增生、血管狭窄和局灶性缺血坏死等，都严重威胁着人类的健康。在开展上述疾病的研究，以及作用心血管系统的药物研究中，血管内膜损伤的动物模型都是必需的。因此，建立一种确实、可行、安全的血管内膜损伤的动物模型，以取代原有的造模方法，解决普遍存在的成功率低、安全性差、损伤程度不均匀等问题。现就有关情况报告如下。
1 材料与方法
1.1 动物 200～300g SD大鼠，性别不限，由本院动物所提供。
1.2 药物与器械 (1)3%戊巴比妥钠，9-0无损伤缝合线，6.3倍手术显微镜，显微手术器械一套，手术切开包1个。(2)球囊导管:利用介入治疗室扩张冠状动脉的20mm×2.5mm旧球囊导管，由Cordis公司生产，每次使用前，均应检查球囊导管的充放气情况，确保不漏气，并记下充放气的体积差。(3)肝素盐水:将12500U的肝素注射液溶于2500ml生理盐水中备用。
, 百拇医药
1.3 麻醉及术前准备 (1)麻醉:3%戊巴比妥钠腹腔注射，1ml/kg体重。(2)备皮:取仰卧位，用橡皮筋固定四肢及头部，从左下颌后缘至胸骨前缘连线旁开中心0.5cm备皮，常规消毒。
1.4 手术方法 (1)由左下颌后缘向胸骨前端切一斜行切口，钝性分离皮下组织及肌肉，完全暴露左侧颈动脉，用玻璃分针分离与血管并行的神经后，穿入4 # 缝合线，由助手将线提起，在提线两侧各上一个血管夹，先近心，后远心。在手术显微镜下，用显微剪在动脉壁剪一横切口，以血管壁周长的四分之一长度为宜，切口应尽量整齐，一次剪开为佳。随后用肝素盐水冲洗血管内及周围。术者持球囊导管向心脏方向插入血管(此时的导管应插入原配置的引导钢丝，以保持导管的硬度和弹性)，穿过提线后，由助手拉紧提线，并取下近心端的血管夹，继续前送导管，当导管插入深度达到1.5cm左右时，可退出1～2cm引导钢丝，继续前插，深度达到3～3.5cm时停止，此时应完全抽出引导钢丝，向球囊充气(可用注射器，也可用专用充气泵)，根据事前确认的充放气差值充入气体，此时松开提线，应为完全不出 血。充满气后回抽，如感到拉动困难，应是充气过量，可适当放气后再拉，手感能抽动，但阻力较大即可缓慢回抽，因血管径为近心大于远心，所以应边抽边放气，当球囊尾端退出血管壁的切口时，停止拉动，完全放气后，再次插入，如此再重复1次即可。最后，迅速抽出球囊并拉紧提线，再上血管夹。(2)缝合。首先用肝素盐水冲洗血管内外，保证无血凝块及余血，修剪切口，使之平整。在显微镜下用9-0的无损伤缝合线缝合切口，一般缝合5～6针即可，缝合好后先开放远心端的血管夹，再开放近心端的血管夹，如漏血轻微，按压无菌干棉球即可止血，如有大的出血，可再上血管夹后补针缝合。在确认畅通、无出血时，可在创面撒布青霉素粉，肌层整理复位，不需缝合，间断缝合皮肤即可。
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2 效果及注意事项
2.1 效果评价 术后3、5、7天分别麻醉大鼠后，在原切口处切开，分离出血管，外观可见血管明显异于正常血管，明显发绀，以3天最深，5天次之，7天较浅，由此说明，血管内膜的损伤是确实的;损伤随着时间的推移逐渐得到修复。处死大鼠，完全分离颈动脉，可见损伤从主动脉弓分岔到插入切口，纵向剖开施术血管，见血管内壁有极薄的附着物，血管壁明显增厚，血管内膜以3天色最深，依次变浅。损伤的总长度达到3cm左右，根据上述变化，可以说，血管内膜的损伤是确实的(100%);术后无一死亡，说明是安全的。但是有1例的血管内完全凝血，究其原因，可能是创口凝血形成血栓。
2.2 注意事项 (1)术前一定要进行充气、放气的检查，确保球囊导管无漏气、无皱折;长期不用，应洗净晒干，每次使用前及使用间隙，应把球囊及其后的10cm左右浸入肝素盐水中。(2)当球囊插入并充气后，术者应缓慢抽动，如阻力太大，应适当放气，整个过程应遵循边抽边放气的原则，切忌野蛮粗暴。(3)颈动脉切口要尽量的小，以能通过无气的球囊导管为宜，切口要整齐，这样，不但便于操作，而且对显微缝合也极为有利。
3 讨论
该模型的建立有确实可行的优点，且费用较低，但对设备的要求相对较高，如需有手术显微镜、显微器械等，球囊导管如购新品一根就需几千元。可用扩张人冠状动脉的旧导管(医院的数字减影室有)一般来说，一个模型的建造，手术时间约20～25min。
作者单位:1510515广州第一军医大学南方医院
2广州中医药大学
(编辑曲 全), http://www.100md.com(王元占)
血管内膜损伤，是人类多种疾病发生的直接或间接原因，可致机体发生动脉粥样硬化、血栓、血管增生、血管狭窄和局灶性缺血坏死等，都严重威胁着人类的健康。在开展上述疾病的研究，以及作用心血管系统的药物研究中，血管内膜损伤的动物模型都是必需的。因此，建立一种确实、可行、安全的血管内膜损伤的动物模型，以取代原有的造模方法，解决普遍存在的成功率低、安全性差、损伤程度不均匀等问题。现就有关情况报告如下。
1 材料与方法
1.1 动物 200～300g SD大鼠，性别不限，由本院动物所提供。
1.2 药物与器械 (1)3%戊巴比妥钠，9-0无损伤缝合线，6.3倍手术显微镜，显微手术器械一套，手术切开包1个。(2)球囊导管:利用介入治疗室扩张冠状动脉的20mm×2.5mm旧球囊导管，由Cordis公司生产，每次使用前，均应检查球囊导管的充放气情况，确保不漏气，并记下充放气的体积差。(3)肝素盐水:将12500U的肝素注射液溶于2500ml生理盐水中备用。
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1.3 麻醉及术前准备 (1)麻醉:3%戊巴比妥钠腹腔注射，1ml/kg体重。(2)备皮:取仰卧位，用橡皮筋固定四肢及头部，从左下颌后缘至胸骨前缘连线旁开中心0.5cm备皮，常规消毒。
1.4 手术方法 (1)由左下颌后缘向胸骨前端切一斜行切口，钝性分离皮下组织及肌肉，完全暴露左侧颈动脉，用玻璃分针分离与血管并行的神经后，穿入4 # 缝合线，由助手将线提起，在提线两侧各上一个血管夹，先近心，后远心。在手术显微镜下，用显微剪在动脉壁剪一横切口，以血管壁周长的四分之一长度为宜，切口应尽量整齐，一次剪开为佳。随后用肝素盐水冲洗血管内及周围。术者持球囊导管向心脏方向插入血管(此时的导管应插入原配置的引导钢丝，以保持导管的硬度和弹性)，穿过提线后，由助手拉紧提线，并取下近心端的血管夹，继续前送导管，当导管插入深度达到1.5cm左右时，可退出1～2cm引导钢丝，继续前插，深度达到3～3.5cm时停止，此时应完全抽出引导钢丝，向球囊充气(可用注射器，也可用专用充气泵)，根据事前确认的充放气差值充入气体，此时松开提线，应为完全不出 血。充满气后回抽，如感到拉动困难，应是充气过量，可适当放气后再拉，手感能抽动，但阻力较大即可缓慢回抽，因血管径为近心大于远心，所以应边抽边放气，当球囊尾端退出血管壁的切口时，停止拉动，完全放气后，再次插入，如此再重复1次即可。最后，迅速抽出球囊并拉紧提线，再上血管夹。(2)缝合。首先用肝素盐水冲洗血管内外，保证无血凝块及余血，修剪切口，使之平整。在显微镜下用9-0的无损伤缝合线缝合切口，一般缝合5～6针即可，缝合好后先开放远心端的血管夹，再开放近心端的血管夹，如漏血轻微，按压无菌干棉球即可止血，如有大的出血，可再上血管夹后补针缝合。在确认畅通、无出血时，可在创面撒布青霉素粉，肌层整理复位，不需缝合，间断缝合皮肤即可。
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2 效果及注意事项
2.1 效果评价 术后3、5、7天分别麻醉大鼠后，在原切口处切开，分离出血管，外观可见血管明显异于正常血管，明显发绀，以3天最深，5天次之，7天较浅，由此说明，血管内膜的损伤是确实的;损伤随着时间的推移逐渐得到修复。处死大鼠，完全分离颈动脉，可见损伤从主动脉弓分岔到插入切口，纵向剖开施术血管，见血管内壁有极薄的附着物，血管壁明显增厚，血管内膜以3天色最深，依次变浅。损伤的总长度达到3cm左右，根据上述变化，可以说，血管内膜的损伤是确实的(100%);术后无一死亡，说明是安全的。但是有1例的血管内完全凝血，究其原因，可能是创口凝血形成血栓。
2.2 注意事项 (1)术前一定要进行充气、放气的检查，确保球囊导管无漏气、无皱折;长期不用，应洗净晒干，每次使用前及使用间隙，应把球囊及其后的10cm左右浸入肝素盐水中。(2)当球囊插入并充气后，术者应缓慢抽动，如阻力太大，应适当放气，整个过程应遵循边抽边放气的原则，切忌野蛮粗暴。(3)颈动脉切口要尽量的小，以能通过无气的球囊导管为宜，切口要整齐，这样，不但便于操作，而且对显微缝合也极为有利。
3 讨论
该模型的建立有确实可行的优点，且费用较低，但对设备的要求相对较高，如需有手术显微镜、显微器械等，球囊导管如购新品一根就需几千元。可用扩张人冠状动脉的旧导管(医院的数字减影室有)一般来说，一个模型的建造，手术时间约20～25min。
作者单位:1510515广州第一军医大学南方医院
2广州中医药大学
(编辑曲 全), http://www.100md.com(王元占)