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编号:10225524
综合法制作大鼠萎缩性胃炎模型的实验研究
http://www.100md.com 《中国医学杂志》 1992年第2期
     作者:李兆申 全山丛 许国铭 王世祥

    单位:第二军医大学附属长海医院*

    关键词:胃炎,萎缩性;动物,实验

    摘要 采用对大鼠主动免疫2次和胆法及热水灌胃连续70天的综合方法 摘要 采用对大鼠主动免疫2次和胆法及热水灌胃连续70天的综合方法,制作成大鼠萎缩性胃炎模型.模型组鼠体重、胃粘膜pH值、胃粘膜血流量和电位差、病理改变(粘膜变薄,腺体减少,炎细胞浸润和肠腺化生),与正常组比较,均差异有非常显著意义(p<0.01),制模结束后继续喂养活45天,模型组鼠以上指标与正常组比较,仍均有显著或非常显著差异(P<0.05或P<0.01).本法制作的大鼠萎缩性胃炎模型适用于药物的疗效观察.

    慢性萎缩性胃炎,(Chronic Atrophic Gastritis,简称CAG)是一种常见的危害人们身体健康的疾病.近年来研究表明,它与胃癌的发生有十分密切的关系.实验性萎缩性胃炎的研究,是慢性萎缩性胃炎研究的重要课题.尽管制作萎缩性胃炎动物模型的方法较多[1-3],但成功率均不令人满意.我们根据目前公认的综合性病因[2],对以往动物模型制作方法作了改良,采用主动免疫和胆法及热水灌胃同时进行的综合方法,获得了较满意的效果,现报告如下:
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    材料和方法

    一、动物及分组

    健康雄性SD大鼠(体重200-250g)40只,按体重随机分成4组:模型I组、模型II组、正常I组和正常II组.每组各10只,分笼喂养,每笼5只.

    二、实验方法

    1、模型I组、模型II组:采用同时进行主动免疫和胆法及热水灌胃的综合方法,制作大鼠萎缩性胃炎模型.(1)主动免疫:按参考文献[1-3]介绍的方法,每只大鼠皮下注射佐剂抗原(用同种大鼠胃粘膜的生理盐水的组织匀浆与Freund佐剂以1:1配成的乳剂)0.3ml,1个月后重复注射1次.(2)胆法灌胃:在做主动免疫的同时,采用无化脓性炎症病人的引流的胆法,按12。5ml/kg给大鼠灌胃(灌胃前4小时停食,自由饮水),每天1次,连续70天.(3)热水灌胃:在用胆法灌胃的同天(与胆汁灌胃间隔5小时0,用50.c热水12.5ml/kg灌胃,每天1次,连续70天.
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    2.正常I组、正常II组:生理盐水12.5ml/kg灌胃,每天2次(与模型I组,模型II组灌胃时间同步),连续70天.

    3.以上4组灌胃结束(共70天)后第2天,模型I组,正常I组大鼠麻醉(戌巴比妥纳,40mg/kg,腹腔内注射)状态下剖胃,测定大鼠腺胃粘膜pH,胃粘膜血流量,胃粘膜电位差,然后取材,切片做病理观察.模型II组,正常II组大鼠继续喂养45天,同模型I组,正常I组方法进行处理.

    三.观察指标

    1.一般情况:动物精神状态,活动情况,毛发光泽度及食欲.

    2.体重:1次/周.

    3.胃粘膜pH:采用微玻璃pH电极直接测定法.

    4.胃粘膜血流量:采用激光多普勒血流计法.
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    5.胃粘膜电位差:采用Ag-AgC1电极直接测定法.

    6.组织学改变:胃粘膜厚度,腺体,炎细胞浸润及肠腺化生情况.

    结果

    一.一般情况:2个正常组均优于2个模型组.模型I组在第30,35天各死亡1只模型II组在第35天死亡1只.

    二.体重变化(图1)/Images/2003/8/12/10/32/80/45_1.GIF (7729 bytes)

    一.一正常I组 --正常II组

    一..一模型II组--模型II组
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    图1各组大鼠体重(均值)变化

    模型I组,模型II组大鼠体重增长逐渐减慢,在第10周时,与正常I组,正常II组比较,差异均有显著意义(P<0.01).在灌胃结束后的继续喂养过程中,模型II组大鼠体重明显低于正常II组(P<0.01).

    三.胃粘膜pH,血流量,电位差值的变化见表1.

    表1 各组大鼠胃粘膜pH,血流量,电位差的比较(Image60.gif (871 bytes)s)

    组别

    鼠数

    pH
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    血流量(v)

    电位差(mv)

    模型I组

    8

    5.7±0.9*

    3.1±0.7*

    0.2±6.8*

    正常I组

    10

    3.6±0.6

    5.0±0.7

    19.7±5.7

, 百拇医药     模型II组

    9

    5.1±0.8Δ

    3.9±0.5Δ

    12.2±5.9ΔΔ

    正常II组

    10

    3.6±0.7

    5.1±0.6

    19.9±6.4

    注:模型I组.正常I组为灌胃70天时的胃粘膜变化,模型II组,正常II组为灌胃结束后继续喂养45天时的胃粘膜变化(表2同)
, 百拇医药
    *与正常I组比较,P<0.01,Δ与正常II组比较,P〈0.01,ΔΔ与正常II组比较,P〈0.05

    四.组织学改变

    正常I组,正常II组鼠多为正常胃粘膜,个别有炎细胞浸润,模型I组,模型II组大鼠均有胃粘膜变薄,腺体减少,炎细胞浸润和肠腺化生(图2-7)等病理改变.各组组织学改变例数见表2.

    表2 各组大鼠的胃组织学变化

    组别

    鼠数

    粘膜变薄

    腺体减少

    炎细胞浸润

, http://www.100md.com     肠腺化生

    模型I组

    8

    7*

    8*

    8*

    6*

    正常I组

    10

    0

    0

    2

    0

    模型II组
, 百拇医药
    9

    7Δ

    7Δ

    6ΔΔ

    5ΔΔ

    正常II组

    10

    0

    0

    1

    0

    *与正常I组比较P<0.01;与正常II组比较ΔP<0.01,ΔΔP<0.05讨论

    慢性萎缩性胃炎的病因错综复杂,至今尚未完全明了.目前公认的因素是综合性的,如胃粘膜的慢性刺激,慢性酒精中毒,胆法返流,自体免疫等[1-3].临床病理变化主要为胃粘膜腺体广泛性破坏,粘膜变薄,淋巴细胞,浆细胞等的浸润,肠腺化生及假性幽门腺化生,甚至出现不典型增生及间变,导致胃粘膜屏障功能低下,胃粘膜血流量下降和沁酸减少.
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    我们对大鼠采用主动免疫2次,同时胆法及热水灌胃连续70天的综合方法,制成大鼠萎缩性胃炎模型.模型I组大鼠在第10周时,体重明显低于正常I组;胃粘膜PH明显升高,胃粘膜血流量,电位差明显降低,病理改变的发生例数均明显高于正常I组.模型II组大鼠在制模方法结束后继续喂养45天,其体重明显低于正常II组,胃粘膜pH明显高于正常II组,GMBF和PD均明显低于正常II组,病理改变的发生例数均明显高于正常II组,说明该方法制作的大鼠萎缩性胃炎模型较稳定,适用于药物的疗效观察./Images/2003/8/12/10/32/80/45_3.GIF (193278 bytes)

    图2 正常I组大鼠正常胃粘膜 HE×100 图3 正常II组大鼠正常胃粘膜HE×100 图4模型I组大鼠胃粘膜变薄,腺体减少HE×100 图5模型II组大鼠腺体减少,炎细胞浸润 HE×100 图6 模型I组大鼠胃粘膜腺体减少,炎细胞浸润滑HE×400 图7模型II组大鼠胃粘膜炎细胞浸润,肠腺化生 HE×100
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    参考文献

    1.徐光炜主编.胃癌.北京:人民卫生出版社,1987:300

    2.畔柳武雄,他.免疫学からみた消化管疾患.东京:株式会社医学书院,1974:128

    3.Fumil H,et ,al.Effect of experimental immune atrophic gastrtitis on the induction of gastric carcinoma by X-irradiation in ICR mine.Jpn J Cancer Res 1976;67:335.

    4.李兆申,等.大鼠胃粘膜血流量与泌酸关系.第二军医大学学报 1988;9:514

    5.李兆申,等.内镜下测定胃粘膜区域电位.内镜1990;7:156

    *上海,邮政编码200433, http://www.100md.com