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编号:10226738
精细胞及血单个核细胞中丙型肝炎病毒RNA及基负链检测
http://www.100md.com 《中国医学杂志》 1994年第5期
     作者:

    刘芳华 田庚善 傅希贤

    单位:100034北京医科大学第一医院感染疾病科

    关键词:肝炎病毒,丙型;白细胞,单核;精细胞;聚合酶链反应

    中华医学杂志940511.htm 摘要 用聚合酶链反应(PCR)方法对8例慢性丙型肝炎患者的血浆、外周血单个核细胞(PBMC)、精液和精细胞中的正链和负链丙型肝炎病毒(HCV)RNA进行检测,以了解HCV在肝外细胞中是否存在,是否复制。结果血浆中正链HCV RNA均阳性,而负链HCV RNA全部阴性;PBMC中正链HCV RNA阳性者5例,其中2例检出负链HCV RNA。在3例留取精液的患者中1例精液和精细胞中检出正链HCV RNA。精细胞末次洗液HCV RNA阴性,精细胞负链HCVRNA阴性。上述结果提示:(1)血浆中可能仅有正链HCVRNA存在;(2)HCV可在PBMC中存在,并可能在其中复制;(3)精液中有HCV存在,因此通过性交传播丙型肝炎的可能性确实存在,但HCV可能不在精细胞中复制。
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    丙型肝炎病毒(HCV)是一种正链RNA病毒[1],其复制过程不详。HCV可能为黄病毒科(flaviviridae)一个成员,与瘟病毒属(pestiviruses)具亲缘关系[2]。而黄病毒与瘟病毒的复制首先需要合成负链RNA,然后以此为模板,合成正链RNA,这样病毒得以复制[3]。1992年Takehara等[4]在慢性丙型肝炎患者肝组织中检出负链HCVRNA,说明HCV也是通过负链RNA中间体进行复制的。在组织细胞中检出负链HCVRNA则提示HCV在该组织细胞复制,外周血单个核细胞(PBMC)中是否有负链HCVRNA存在还无定论[4,5]。我们用聚合酶链反应(PCR)方法对慢性丙型肝炎患者的血浆、PBMC、精液、精细胞中的正链和负链HCVRNA进行了检测,以了解HCV是否在这些肝外细胞中存在和复制,并探讨其传播途径。
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    资料及方法

    一、标本采集

    1.慢性丙型肝炎患者8例,年龄24-63岁。男7例,女3例。

    2.取肝素抗凝血5ml,用淋巴细胞分层液获得PBMC,用Hanks液洗4遍,留取PBMC末次洗涤液待检。PBMC按每份l×105个分装,-20℃保存待检。

    3. 人工排精获得精液,置4℃8小时充分液化。离心分离出精液,用生理盐水洗涤精细胞5遍,留取末次洗涤液。分装精细胞,-20℃保存待检。

    二、检测方法

    1.抗-HCV检测用第二代抗-HCV检测试剂盒(上海实业科华生物技术有限公司产品)检测。
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    2.HCV RNA检测根据HCV基因组5'非编码区设计两对引物[6],进行套式PCR。引物由中国科学院微生物研究所合成:

    外 1:(-324~-304)顺义5'-GGC GAC ACT CCA CCA TAG ATC,外 2:(-1~-21)反义5'- GGT GCA CGG TCT ACG AGA CCT,内 1:(-294~-275)顺义5'-TGA GGA ACT ACT GTCTTC AC,内 2:(-76~-96)反义5'- ACT GCT AGC CGA GTA GTG TTG。

    (1)HCV RNA的提取:被检测标本50μl加DS[7]400μl,室温下1小时酚氯仿提取1次,氯仿提取1次,乙醇沉淀,提取物加焦碳酸二乙酯(DEPC)水15μl;RNA酶抑制剂(RNasin)15单位(华美生物工程公司)。(2)逆转录: 5×AMV逆转录酶缓冲液4μl,10mmol/L脱氧核苷 三磷酸(dNTP)各1μl,20μ mol/L引物外11μl(此为检测负链时使用,检测正链HCVRNA则改用引物外4),AMV逆转录酶(Pormega)2单位,RNA提取物11μl,反应体积20μl,液体石蜡加封后置42℃20分钟(逆转录)。100℃30分钟(灭活AMV逆转录酶),反应管置于冷乙醇速冷。(3)第1次PCR:10×Taq酶缓冲液5μl,10mmol/L dNTP lpμl,20μmol/L引物外1、外2各1.5μl,水18μl,Taq酶2单位(华美),上述试剂加于逆转录管中,反应体积50μl。依次置93℃l分钟, 50℃ 30秒,72℃l分钟30秒,循环30次。最后置72℃5分钟。(4)第2次PCR:10×Taq酶缓冲液5μl,dNTP 10mmol/L各1μl,20μmol/L引物内1、内2各1.5μl,水33.5μl,Taq酶2单位,第1次PCR产物5μl。反应体积50μl,循环时间,温度同第1次PCR。(5)电泳:取第二次PCR产物。10 μl,经1.2%琼脂糖电泳,阳性产物为219bp。(6)质量控制:正链与负链HCV RNA检测同时进行,作为平行对照。每次实验均各设2份阴性,2份阳性对照,所有结果均经重复证实。
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    结 果

    一、抗-HCV检测

    所有8例标本血浆抗-HCV均阳性。

    二、正链与负链HCV RNA检测

    8例慢性丙型肝炎患者血浆、PBMC、精液、精细胞正链与负链HCVRNA检测结果见附表。

    末次洗涤液检测PBMC和精细胞HCVRNA全部阴性。

    附表 正链与负链丙型肝炎病毒RNA的PCR检测结果

    例号

    性别

    血浆
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    外周血单个核细胞

    精液

    精子

    正链

    负链

    正链

    负链

    正链

    负链

    正链

    负链

    1

    女

    +
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    2

    女

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    3

    女

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    4

    男

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    男

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    6

    男

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    7
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    男

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    8

    男

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    讨 论

    一、血浆和PBMC中的HCV RNA

    对于血浆和PBMC中负链HCVRNA的检测,文献报道结果截然相反。Takehara等[4]报道,血清、肝组织、PBMC中全部可测出正链HCVRNA,但负链HCVRNA仅能在肝组织内测出。而Zignego等[5]报道在血清和PBMC中均能测出负链HCVRNA,且正链和负链HCVRNA检测结果高度一致。

    在逆转录过程中,如果标本中只有正链RNA,用下游引物(反义)进行逆转录,可以合成cDNA第1链,进而可进行PCR扩增。如果换用上游引物(顺义)做逆转录,就无法合成DNA第1链,以后的PCR也就无法进行。如标本中有负链HCVRNA存在,换用上游顺义引物后,这时对于负链RNA来说就是反义引物,可以合成cDNA第1链,进而PCR扩增出所需片段,这反映了标本中有负链HCV RNA存在。这是负链检测的原理。在逆转录之后的PCR反应中,上游顺义引物和下游反义引物是同时加入的,如果在PCR反应体系中含有未被完全灭活的逆转录酶,那么,只要有模板存在,不管是正链还是负链,都可以被逆转录酶用作模板,在大量存在的上游顺义或下游反义引物的引导下合成cDNA第1链,这时将无法鉴别原始模板是正链还是负链。由此可见,负链HCVRNA检测的关键是逆转录酶的灭活。
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    Fong等[3]的逆转录酶灭活方法,即需95℃20分钟,而Takehara等[4]证明逆转录酶的完全灭活需沸水浴30分钟, Fong等[3]提到,为了排除逆转录酶灭活不全的可能,在逆转录时不加引物作为对照,实际上这种对照是不能除外逆转录酶剩余活性对负链HCVRNA检测的影响的,因为正如前述,在随后的PCR扩增中,反应体系中有大量的顺义和反义引物存在。

    本组8例慢性丙型肝炎患者血浆抗-HCV和正链HCVRNA均阳性,但负链HCV RNA均阴性,与Takehara等[4]的结果一致,我们倾向于认为这个结果更为可靠。提示在血浆中可能仅有正链HCV RNA存在。

    在8例慢性丙型肝炎患者中,有5例PBMC正链HCVRNA阳性,其中仅有2例负链HCVRNA阳性,这个结果说明HCV存在于PBMC内,而且可能在PBMC中复制。PBMC中检出正链和负链HCVRNA是血清中的HCV感染PBMC的结果,还是来源于PBMC的母细胞,这些问题有待进一步研究。
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    二、精细胞中的HCVRNA

    精液中检出HCVRNA已有报道[8],但精细胞中是否有HCV尚不清楚。检测本组的3例男性慢性肝炎患者所留取的精液,结果其中1例精液和精细胞HCVRNA阳性。提示通过性交传播丙型肝炎的可能性是确实存在的。精细胞经洗涤5遍,洗涤液中已测不出HCVRNA,而在精细胞仍能测出HCV RNA,提示HCV可能存在干精细胞内,或者是吸附在精细胞表面不被洗去,精细胞负链HCVRNA阴性,提示如果HCV确实存在于精细胞内的话,可能也不在精细胞中复制。HCV在精细胞中存在,对丙型肝炎的垂直传播是否有影响值得深入研究。

    参 考 文 献

    1.Choo QL, Weiner AJ, Overby LR, et al. Hepatitis C virus: the major causative agent of viral non-A, non-B hepatitis. Brit Med Bull, 1990, 46 : 423.
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    2.Houghton M, Weiner AJ, Han JG, et al. Molecular biology of the hepatitis C viruses: implication for diagnosis, development and control of viral disease. Hepatology, 1991, 14 : 381.

    3.Fong TL, Shindo M, Feinstone SM, et al. Detection of replicative intermediates of hepatitis C viral RNA in liver and serum oof patients with chronic hepatitis C. J Clin Inv, 1991, 88 : 1058.

    4.Takehara T, Hayashi N, Mita E, et al. Detection of the minus strand of hepatitis C virus RNA by reverse transcription and polymerase chain reaction: implication for hepatitis C virus replication in infected tissue. Hepatology, 1992, 15 : 387.
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    5.Zignego AL, Macchia D, Monti M, et al. Infection of peripheral mononuclear blood cells byhepatitis C virus. J Hepatology, 1992, 15 : 382.

    6.Choo QL, Richman KH, Han JH, et al. Genetic organization and diversity of the hepatitis C virus. Proc Natl Acad Sci USA, 1991, 88 : 2451.

    7.Chomczyski P, Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Analytical Biochemistry, 1987, 162 : 156.

    8.Liou TC, Chang TT, Young KC, et al. Detection of HCV RNA in saliva, urine, seminal fluid and ascites. J Med Virol, 1992, 37 : 197.

    (收稿:1993-06-01 修回:1994-01-25), http://www.100md.com