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编号:10222902
组织损伤修复过程中的程序性细胞死亡
http://www.100md.com 《中国修复重建外科杂志》 1998年第6期
     作者:蒋礼先* 傅小兵*

    单位:* 解放军第304医院创伤研究室(北京,100037)

    关键词:

    组织损伤修复过程中的程序性细胞死亡 程序性细胞死亡(programmed cell death, PCD)或称凋亡(apoptosis)是一个年轻且诱人的研究领域,它在生命活动中广泛存在,维持机体的动态平衡。近年来发现,PCD也参与了创伤修复的全过程,其紊乱将导致组织修复发生失控,一方面表现为组织修复障碍,结果是形成慢性难愈合创面;另一方面表现为组织修复过度,形成增生性瘢痕或瘢痕疙瘩。我们就组织损伤修复中PCD与坏死的特征、PCD的调节途径与DNA修复及组织损伤修复的PCD的实验与临床研究几方面作简要概述。

    1 组织损伤修复过程中PCD与坏死的特征

    1.1 PCD的形态特征
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    死亡是生命的表现形式,PCD与通常所说的坏死有着显著的区别。从形态上看[1],PCD的细胞萎缩,胞质空泡化,一些细胞器如线粒体、高尔基体等内容物消失,染色质浓集、边缘化,最后细胞破裂,其外仍被破裂后的细胞膜加以包裹,形成凋亡小体。由于内容不渗出,故不引起炎性反应;而坏死则不同,坏死细胞表现为水肿,细胞间隙增大,膜破裂,内容物渗出,出现炎性反应。但无论是PCD还是坏死,细胞残余均可被吞噬细胞吞噬。故现在倾向认为,组织损伤的最后阶段为坏死,而细胞肿胀、膜破裂等变化,则称为肿瘤样变化[2]

    1.2 PCD的生理生化特征

    PCD除具有典型的形态特征外,细胞本身也经历了复杂的生理生化变化,其DNA在核酸内切酶的作用下以核小体为单位降解, 凝胶电泳出现“梯状”带, 这是PCD的典型特征;而坏死过程中仅出现细胞膜DNA弥散降解, 不形成 “梯状” 带。PCD细胞表面还带有一些特异抗原,如Ley抗原等[3],并且PCD的形态维持与细胞本身表达的一些因子密不可分,其中簇因子(clusterin)和γ-谷丙转氨酶发挥了重要作用。簇因子又称睾酮抑制前列腺信息-2 (testest-erone-repressed prostate message-2, TRPM-2),是近年发现的一种糖蛋白[4],它参与了细胞粘附、集聚和识别,抑制补体的细胞毒活性以及脂质运转等过程,最近又发现它能维护PCD细胞膜的完整性,防止细胞内容物的渗出[5]。而γ-谷丙转氨酶与蛋白作用后,可使蛋白发生交联[6],象支架一样巩固细胞形态,防止细胞裂解,与簇因子一道维持细胞和凋亡小体的形态。所有这些生理生化变化,均需要蛋白的合成,从这种意义上讲,PCD是一个主动的自杀过程,而坏死则不同,它不需要合成新的蛋白质,整个过程消极被动,是细胞在伤害性刺激下被迫作出的反应。
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    2 PCD调节途径与DNA修复

    自从发现PCD以来,人们逐渐认识到它是一个在基因参与下的细胞死亡过程,并且机体内、外多种因素均可影响这一病理过程。随着研究的深入,人们对PCD的机制有了一定了解,其细节仍不十分清楚。目前认为PCD可通过三条途径分别起作用:①Ca2+和辐射等信号诱导;②酶的激活;③基因的调控。

    2.1 Ca2+和辐射等信号的诱导

    PCD与Ca2+关系密切,Kim[7]发现PCD细胞线粒体内存在结晶状的Ca2+,含量较正常细胞显著增高。体外实验表明,胞外Ca2+浓度增高,能诱导PCD,但Ca2+离子通道阻断剂[8]能阻断PCD,其机制可能是胞内Ca2+的升高,激活了Ca2+依赖性核酸内切酶,导致DNA的规则降解。由于辐射能直接损伤细胞DNA[9]。加之细胞修复损伤的DNA时并不总是忠实的保持原有信息,总会发生误差,如果误差发生在基因的前导序列和调控序列,则会引发出一些基因的打开与关闭,从而导致PCD。
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    2.2 酶的激活

    除Ca2+和辐射等的因素外,表达和(或)链式激活特定蛋白质可能是调节PCD的关键因素之一。现已证实[10],白介素-1β转换酶(interleukiα-1β converting enzyme, ICE)激活成纤维细胞PCD,它与线虫基因CED-3有30%的同源性,其作用可能是与白介素-1β(inferleukin-1β,IL-1β)前体分子来源的底物相互作用有关。ICE/CED-3蛋白酶家族成员包括CPP-32和ICH-1。CPP-32对酶原的蛋白水解作用可能是对各种死亡刺激反应的早期过程。激活的CPP-32参与了PCD的另一早期过程——特异性地切断多聚ADP核糖多聚酶[poly (ADP-ribose) polymerase, PARP][11]。活化形式的CPP-32又名Yama或apopain[12,13]。抑制Yama-apopain活性或应用特异的C末端抑制剂或抗死亡蛋白CrmA,能够阻断PARP的切断和PCD。PARP在核内含量丰富,主要参与损伤DNA的修复。Yama-apopain切断PARP,使之失去与DAN结合位点,阻止新的活化PARP结合到损伤DNA上[13]。有意思的是,Ca2+-Mg2+依赖性核酸内切酶的特异性核小体切割作用能够被多聚ADP核糖基化抑制,表明被Yama-apopain切断的PARP将不再抑制核酸内切酶活性的上调[14],而且PARP活性可能参与调节另一个PCD调节物P53的表达[15]。然而,Yama-apopain控制的PCD前旁路以及PARP在该旁路中的作用尚有待进一步研究,并且各种ICM/CED-3蛋白酶家族成员之间的相互作用,也有待于进一步的证实。
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    DNA依赖性蛋白激酶(DNA-dependent protein kinase, DNA-PK)也可能参与了PARP途径[16]。DNA-PK由70 ku的催化亚基与80 ku的DNA结合亚基组成,具有丝氨酸/酪氨酸激酶活性,其活性依赖与DNA的结合,通过磷酸化许多DNA结合蛋白、非结合蛋白以及转录因子,参与细胞双链DNA的修复、转录。近年发现,DNA-PK通过激活与PCD有关的蛋白酶,切割PARP导致PCD,而bcl-2或CPP-32/CED-3抑制剂可以阻断该作用[17],故DNA-PK可能为ICE/CED-3家族成员。除PARP途径外,为人们所熟悉的蛋白激酶如蛋白激酶C(protein kinase C, PKC)、蛋白激酶A(protein kinasc A, PKA)也可能参与了PCD。Lwszczynski[18]报道,Calphostine C能抑制PKC活性,同时发现PCD,该作用与激活PKA效果相同,因此PKC、PKA可能间接地调控PCD。

, 百拇医药     2.3 基因的调控

    研究表明,无论是Ca2+和辐射的激活还是酶的作用,都可能通过基因的调控,而bax基因可能处于调控的中心环节。bax蛋白二聚体能诱导PCD[19],而许多基因是通过bax来调节PCD的,其中研究较为清楚的有P53、bcl-2(bcl-x)和bad。P53基因其功能起先比较模糊,后来发现P53分为两种:野生型P53基因(wtp53)与突变型P53基因,其功能互不相同,野生型P53促进PCD,而突变型P53则抑制PCD。后来证实,野生型P53通过增加bax的转录,导致胞内bax含量增高[20],从而加速PCD。而bcl-2则不同[21],它与bax具有同源性,能与bax相结合,阻碍bax/bax的结合,抑制PCD。Borner等[22]的工作表现,bcl-2的保护作用与bcl-2疏水端33个氨基酸无关,切除这33个氨基酸的bcl-2产物同样能有效地保护PCD,推测可能该片段与bax无同源性。其中bcl-x与bcl-2具有相似的作用,并且bcl-x降解的长片段bcl-xL也能与bax相互作用阻碍PCD[23]。而bad基因则与P53、bcl-2(bcl-x)功能相反,它与bax相结合加速细胞死亡。另一种观点认为bcl-2可能与自由基的防护有关。研究表明,bcl-2主要位于线粒体膜,其次是内质网,再其次是细胞核[24,25],这些均是自由基易生成部位。Hockenbery等[26]证实bcl-2是通过抗氧化作用抑制PCD。bcl-2表达的神经细胞,胞内活性氧自由基种类生成减少[27]。凡是高表达bcl-2的细胞,线粒体跨膜电位升高,可免除PCD[28]
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    PCD调节的以上三种途径并不是完全分离,而是互相交织,形成一个网络,其中最简易的方式是:外界刺激通过细胞受体,作用于酶,通过酶作用于基因的表达,从而导致PCD。下面将要提到的转移生长因子(transforming growth factors, TGF-β),它可通过与其受体结合,作用于PARP酶,转而作用于P53等基因,诱导创伤修复组织中的PCD。

    3 组织损伤和修复中PCD的实验与临床研究

    组织损伤的修复一直受到人们的重视,研究表明[29]损伤初期,组织血管破裂,创面炎性物质大量释放,随后损伤部位边缘上皮细胞激活,不断向创面爬行,而成纤维细胞向创面迁移,并转化为成纤维母细胞,不断分裂增殖,同时分泌胶原填补缺损组织。近年已有文献报道,PCD参与了组织损伤与修复过程。

    3.1 不同组织损伤与修复中的PCD
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    组织损伤中PCD细胞的类型和部位因损伤类型而异。一般而言,在创伤修复中,角质细胞和间质细胞均可能发生凋亡现象,而成纤维细胞则更易。Richard等[30]报道,组织损伤后,损伤部位周缘的成纤维细胞分裂增殖,至损伤第4天,成纤维细胞向损伤部位迁移,一旦到达损伤部位,就分泌Ⅰ型胶原以及其它胞外基质;至第7天,胞外基质已非常丰富,此时成纤维细胞转化为成纤维母细胞,它富含成束的肌动蛋白,通过肌动蛋白牵引伪足的伸缩,造成伤口收缩,最后成纤维细胞发生PCD。若该过程障碍,则可能导致瘢痕增生,Bermouliere等[31]观察到增生性瘢痕中成纤维细胞数目下降。同时如果创面较深,伤及神经,间接累及肌肉,但是失去神经支配的肌肉是否发生PCD,目前尚有异议。Fidziansk等[32]用电子显微镜观察了肌肉萎缩的患者,以及新生大鼠去神经损伤肌肉,发现细胞皱缩、胞核浓集、出芽并表现为锯齿状,认为发生了PCD。Rodrigues等[33]则认为去神经肌细胞虽然和典型的淋巴细胞形态相似,但DNA片断化检测没检测到其DNA片断,不能认为PCD。Tidball[34]观察到,萎缩性肌肉中首先出现PCD,随后可见细胞坏死。现已证明,营养或营养因子缺乏是PCD的诱导因素之一,Sloviter等[35]发现肾上腺切除后大鼠齿状脑回粒细胞发生PCD。临床有文献报道严重消耗性疾病,其胸腺、肌肉等组织器官PCD发生。由于神经不但支配肌肉的活动,并为肌肉提供营养作用,因此不能排除去神经肌肉后PCD的可能。
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    3.2 损伤与修复中PCD的发生机制

    创伤条件下PCD的机制尚不清楚,由于创伤因素多样,牵涉的组织、细胞较多,决定了PCD的原因也是多种多样的。伤口感染、血管破裂以及一些外源性、内源性异物导致大量白细胞浸润,组织细胞在内毒素脂多糖的作用下可发生PCD[36]。Nakajima等[37]证实,皮肤颗粒层下角质细胞组成性表达Fas基因,而浸润的白细胞表面则表达Fas配体,与Fas受体相结合,诱导角质细胞发生PCD,同时由于创面破损,大量液体渗出,胞外Ca2+升高,对创伤及其边缘的细胞具有毒害作用,这种PCD总的来说是损伤性的,是对损伤的二期反应。但损伤过程中也存在生理条件下的PCD。值得注意的是,一些生长因子如TGF[38]和成纤维细胞生长因子(fibroblast growth factor, FGF)[39]已被证实具有诱导细胞的增殖、迁移作用,参与组织的修补,现在发现它们也能诱导PCD,其作用可能是潜在的[40],表现为促进肉芽组织的消退,加速正常组织的形成。该作用是先诱导细胞的增殖,随后发生PCD,还是由于它对创面不同微环境下不同细胞分别扮演有丝分裂原或PCD诱导剂的角色不同,还不得而知。已知道的是创伤愈合可能存在PCD的正反馈调节[41],被诱导的细胞如内皮细胞PCD,将导致血管萎缩、退化,局部组织缺氧,当缺氧超过一定限度,转而诱导其它细胞如成纤维细胞、间质细胞的PCD,促进创面向正常组织转变;另一恶化的正反馈是,成纤维细胞过度增殖,不断分泌胞外基质如胶原、纤维连接蛋白等,这些胞外基质能抑制PCD[40,42],反过来又促进胞外基质的形成,而导致瘢痕及瘢痕疙瘩的形成。
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    在组织损伤修复中,细胞增殖与PCD是相辅相成的,增殖障碍,则不能填补缺损组织;PCD障碍,则细胞不断分裂增殖,表现为增生性瘢痕,因此创伤愈合与PCD的研究已引起人们的重视,从PCD方面就临床创伤愈合治疗措施进行了研究,发现压迫疗法有助于伤口的愈合,防止瘢痕增生,有助于组织缺氧,加速细胞的PCD,促进肉芽组织的萎缩、消失,防止瘢痕形成。损伤早期伤口的正确处理具有重要意义,Miadelets[43]观察到,创伤早期冷处理创面,有助于毛发及皮脂腺的再生,抑制PCD,有利于后一阶段角质细胞有丝分裂能力的加强,促进伤口修复。

    4 参考文献

    1 Kerr JFR, Wyllie AH, Currie. Apoptosis: A basic biological phenomenon with wide ranging implications in tissue kinetics. Brit J Cancer, 1972;26(4):239
, http://www.100md.com
    2 Trump BF, Berezesky ZK. The role of altered Ca2+, regulation in apoptosis, oncosis and necrosis. Biochem Biophys Acta, 1996;1313(3):173

    3 Seiki M, Honami N, Masakazu A et al. Apoptosis as a mechanism of skin renewal: Ley-antigen expression is involved in an early event of a cell's commitement to apoptosis. Histochemistry, 1995;103(8):339

    4 Gobe GC, Buttyan R, Wyburn KR et al. Clusterin expression and apoptosis in tissue remodeling associated with renal regeneration. Kidney Int, 1995;47(2):411
, 百拇医药
    5 Bursch W, Gleesm T, Kleine L et al. Expression of clusterin (testosterone-repressed prostate message-2) mRNA during growth and regeneration of rat liver. Arch Toxical, 1995;69(4):253

    6 Alaoui EL, Mian S, Lawry J et al. Cell cycle kinetics, tissue transglutaminase and programmed cell death (apoptosis). FEBS Lett, 1992;311(2):174

    7 Kim KM. Apoptosis and caleification. Scanning Microsc, 1995;9(4):1137
, 百拇医药
    8 Ray SD, Kamendulis LM, Gurule MW et al. Ca2+ Antagonists inhibit DNA fragmentation and toxic cell death induced by acetaminophem. FASEB J, 1993;7(5):453

    9 Gajdusek CM, Tian H, London S et al. Gamma radiation effect on vascular smooth muscle cells in culture. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 1996;36(4):821

    10 Vauz DL, Haecker G, Strasser A. An evolutionary perspective on apoptosis. Cell, 1994;76(7):777
, 百拇医药
    11 Kaufmann SH, Desnoyers S, Ottaviano Y et al. Specific proteolytic cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase, a early marker of chemotherapy-induced apoptosis. Cancer Res, 1993;53(8):3976

    12 Tewari M, Quan LT, O'Rourke K et al. Yama/CPP32 beta, a mammalian homolog of CED-3, is a Crm A-inhi-bitable protease that cleaves the death substrate poly (ADP-ribose) polymerase. Cell, 1995;81(6):801

    13 Bocholsn DW, Ali A, Thoruberry NA et al. Identification and inhibition of the ICE/CED-3 protease necessary for mammalinal apoptosis. Nature(London), 1995;376(1):37
, http://www.100md.com
    14 De Murci G, Jacobsion M, Shall S. Regulation by ADP-ribosylation. Trends Cell Biol, 1995;5(1):78

    15 Whitacre CM, Hashimotot H, Tsai ML et al. Involvement of NAD-poly (ADP-ribose) metabolism in P53 regulation and its consequences. Cancer Res, 1995;55(7):3697

    16 Lees, Miller SP. The DNA-dependent proteinkinase, DNA-PK: 10 years and no ends in sight. Biochem Cell Biol, 1996;74(4):503

, 百拇医药     17 Le Romancer M, Cosulich SC, Jackson SP et al. Cleavage and inactivation of DNA-dependent protein kinase catealytic subunit during apoptosis in henopus egg extracts. J Cell Sci, 1996;109(3):1321

    18 Lwszczynski D. Regulation of cell cycle and spoptosis by protein kinase C in rat myeloid leukemia cell line. Oncol Res, 1995;7(9):471

    19 Zhan Q, Fan S, Bae I et al. Induction of bax by genotoxic stress in human cells correlates with normal P53 statue and apoptosis. Oncogene, 1994;9(11);3743
, 百拇医药
    20 Selvakumaran M, Lin HK, Miyashita T et al. Immedicate rearly up-regulation of bax expression by P53 but not TGF betal. Oncogene, 1994;9(10):1791

    21 Oltvai ZN, Milliman CL, Rorsmeyer SJ. Bcl-2 heterodimerizes in vovo with conserved bomolog bax that accelerates programmed cell death. Cell, 1993;74(5):609

    22 Borner C, Martion I, Mattmann C et al. The protein bcl-2 alpha does not requir membrane attachment, but two conserved domains to suppress apoptosis. J Cell Biol, 1994;126:1059
, 百拇医药
    23 Yang E, Zha J, Jocke IJ et al. Bad, a heterodimeric partner for bcl-xL and bcl-2, displaces bax and promotes cell death. Cell, 1995;80(3):205

    24 Hockenbery DM, Nunex G, Milliman C et al. Bcl-2 is an inner mitochondrial mebrane protein that blocks programmed cell death. Nature, 1990;348(4):334

    25 Jacobson MD, Burne JF, King MD et al. Bcl-2 blocks apoptosis in cells laking mitochondrial DNA. Nature, 1993;361:365
, http://www.100md.com
    26 Hockenbery DM, Oltval ZN, Yin XM et al. Bcl-2 functions in an antioxidant pathway to prevent apoptosis. Cell, 1993;75(3):241

    27 Kane DJ, Saraftian TA, Anton R et al. Bcl-2 inhibition of neural death: Decreased generation of reactive oxygene species. Science, 1993;262(6):1274

    28 Hennet T, Bertoni G, Richter C et al. Expression of bcl-2 protein enhances the survival of mouse fibrosarcoid cells in tumor necrosis factor-medicated cytotoxicity. Cancer Res, 1993;53(9):1456
, 百拇医药
    29 Bruce A, Mast MD, Gregory S et al. Interactions of cytokines, growth factors, and protease in acute and chronic wounds. Wound Rep Reg, 1996;4(4):411

    30 Richard AF, Clark MD. Regulation of fibroplasia in cutaneous wuond repair. J Med Sci(Am), 1993;306(1):42

    31 Bermouliere A, Baclid C, Bochaton P et al. Apoptosis during wound healing, fibrocontractive disease and vascular wall injury. Int J Biochem Cell Biol, 1997;29(1):19
, 百拇医药
    32 Fidziansk A, Kaminska A. Apoptosis: Abasic pathological reaction of injured neonatal muscle. Pedicatr Pathol, 1991;11(4):421

    33 Rodrigues ADC, Schmalbruch H. Satellite cells and myonuclei in long term denervated rat muscles. Anatomical Rec, 1996;243(5):430

    34 Tidball. Apoptosis precedes necrosis of dystrophin deficinte muscle. J Cell Sci, 1995;108(6):2197

    35 Sloviter RS, Dean E, Neubort S. Electron microscopic analysis of adrenalectomy-induced hippocampal granule cell degeneration in the rat: Apoptosis in the adult cenltral nervous system. J Comp Neurol, 1993;330(3):337
, 百拇医药
    36 Moss SF, Calam J, Agarwal B et al. Induction of gastric epithelial apoptosis by Helicobacter pylori. Gut, 1996;38:498

    37 Nakajima M, Nakajima A, Kayak N et al. Expression of fas ligand and its receptor in cutaneous lupurs: Implication in tissue injury. Clin Immnol Immunopathol, 1997;83(3):223

    38 Antoshina E, Ostronski LE. TGF beta 1 induces growth arrest and apoptosis but not ciliated cell differentiation in rat tracheal epithelial cell culture. In Vitro Cell Dev Biol Anim, 1997;33(3):212
, http://www.100md.com
    39 Shin JJ. Acidic fibroblast growth factor enhances preoxynitrite-induce apoptosis in primary murine fibroblasts. Arch Bochem Biophy, 1996;335(1):32

    40 Grande JP. Role of transforming growth factor-beta in tissue injury and repair. Proc Soc Exp Biol Med, 1997;214(1):27

    41 Kischer. The microvessels in hypertrophic scars, keloids and related lesions: A review. J Submicrosc Cytol Pathol, 1992;24(2):281
, 百拇医药
    42 Nany B, Carolyn JS, Zena W et al. Supression of ICE and apoptosis in mammary epithelial cells by extracellular matrix. Science, 1995;267(5):891

    43 Miadelets OD. Epidermal keratinocyte proliforation, differentiation and apoptosis in the posttraumatic skin regeneration of rats with different initial reactivities. Onctogenez. 1995;26(1):54

    (收稿:1997-12-14修回:1998-05-04), http://www.100md.com