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编号:10227136
静脉免疫球蛋白对脐血B细胞免疫球蛋白释放的调节
http://www.100md.com 《中国医学杂志》 1998年第11期
     作者:李庆生 吴圣楣 应大明 林梓

    单位:200092 上海市儿科医学研究所

    关键词:

    中华医学杂志981113 静脉免疫球蛋白(IVIG)能抑制体外成人B细胞免疫球蛋白(Ig)的释放[1],但对发育不成熟的围产新生儿免疫系统可能产生的影响尚不清楚。本实验旨在观察IVIG对体外脐血B细胞Ig释放的调节及其可能的机制。

    一、对象与方法

    1.对象:脐血为足月新生儿脐静脉血,成人外周血取自健康成年自愿者。

    2.方法:(1)脐血免疫球蛋白释放细胞(IgSCs)数目的检测:E花环沉降法分离T、B细胞。用丝裂霉素C(0.04 g/L)处理T细胞。将T、B细胞接种于抗CD3单克隆抗体(单抗)包被培养板中。4℃过夜,加入T、B细胞悬液。实验组加IVIG 5 mg/ml(美国Baxter Healthcare公司产品),正常对照组加重组白细胞介素-2(rIL-2)100 U/ml)、r-IL-4 50 U/ml、rIL-10 100 U/ml及上述组合培养6天。用反向酶联免疫斑点法(RELISPOT)检测脐血IgSCs数目[2]。(2)成人外周血单个核细胞(PBMC)IgSCs的检测:常规方法获取PBMC,细胞经美洲商陆(0.001 g/L)刺激6天,用RELISPOT检测IgSCs。(3)CD40染色:将脐血单个核细胞(CBMC)或PBMC与IL-4 50 U/ml共同孵育48小时后,用间接免疫荧光标记法进行染色。第一抗体(一抗)用抗CD40单抗(0.01 g/L)的羊抗鼠IgG-FITC。流式细胞仪检测标本。(4)CD40L染色:CBMC与植物血凝素(PHA,0.02 g/L)培养48小时后,加入rIL-2(100 U/ml)继续培养5天。最后再经氟波酯(PMA,0.02 g/L)、钙离子导入剂(ionomycin, 0.5 g/L)诱导16小时后染色。除一抗用抗CD40L单抗外,余同CD40染色。(5)逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)检测IL-2mRNA、IL-4mRNA的表达:CBMC的培养同CD40L染色,但
, 百拇医药
    表1 B细胞及PBMC中阳性IgSCs与3种主要IgSCs之后的百分比(%) 组别

    例数

    细胞因子

    无

    IL-2

    IL-4

    IL-10

    IL-2+IL-4

    IL-2+IL-10

    脐血B细胞

    7

    IgGSCs/总IgSCs
, 百拇医药
    3.2

    4.7

    4.8

    7.2

    10.4

    9.7

    IgASCs/总IgSCs

    1.2

    4.2

    3.4

    3.8

    5.4

    4.2
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    IgMSCs/总IgSCs

    95.6

    91.1

    91.8

    89.0

    84.2

    86.1

    成人血PBMC

    3

    IgGSCs/总IgSCs

    27.6

    31.0

    26.7
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    29.9

    29.3

    35.6

    IgGSCs/总IgSCs

    21.4

    14.0

    11.8

    19.0

    18.2

    11.6

    IgMSCs/总IgSCs

    51.0

    55.0
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    61.5

    51.1

    52.5

    52.8

    注:与正常对照组相比* P<0.05,**P<0.001表2 IVIG抑制脐血B细胞IgSCs的产生情况(阳性IgSCs数/104细胞,±s) 组别

    例数

    细胞因子

    无

    IL-2
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    IL-4

    IL-10

    IL-2+IL-4

    IL-2+IL-10

    正常对照组

    5

    IgGSCs

    11.2±4.2

    30± 9

    29± 16

    49±17

    49± 24

, 百拇医药     101± 40

    IgASCs

    3.8±2.3

    18± 12

    16± 11

    26±14

    25± 14

    44± 22

    IgMSCs

    325.3±108.3

    399±128

    438±130
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    606±67

    395±143

    917±119

    实验组

    5

    IgGSCs

    5.3±3.6*

    18± 9*

    17± 15*

    25±12**

    35± 19*
, 百拇医药
    56± 20**

    IgASCs

    2.5±3.0

    7± 8*

    8± 6*

    13±14*

    16± 12*

    26± 18*

    IgMSCs

    218.3±113.7*
, 百拇医药
    229±112*

    370±156

    332±43**

    292±120*

    596± 31

    注:免疫球蛋白释放细胞IgSCs=IgGSCs+IgASCs+IgMSCsPMA结合ionomycin再诱导的时间为6小时。PBMC只经PMA及ionomycin刺激6小时即予以收集。一步法抽提总RNA,PCR产物经8%聚丙烯酰胺凝胶电泳后观察。

    3.统计学处理:数据以±s表示,采用t检验。
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    二、结果

    1.IVIG抑制体外新生儿B细胞IgSCs的产生:适当刺激条件下的脐血B细胞出现了IgM向IgG及IgA的同种型转换,但由IgM向IgG及IgA转换的百分比低于成人(表1)。IVIG明显抑制了脐血B细胞IgSCs的产生(表2)。

    2.IVIG不改变CD40在CBMC中的表达:用流式细胞仪检测IVIG作用后CD40表达的变化。含及不含IVIG CBMC标本中CD40阳性细胞百分比分别为(18±9)%及(18±8)%。两组比较t=0.977 2,P>0.05。IVIG也不能改变PBMC标本中CD40表达,实验组与对照组比较t=-1.123 5,P>0.05。

    3.IVIG促进CD40L在CBMC中的表达:含及不含IVIG的CBMC标本中CD40L阳性细胞百分比分别为(13±4)%及(28±11)%。两组比较t=-4.1047,P<0.01。含有IVIG的PBMC组及不含IVIG的对照组CD40L阳性细胞百分比分别为(28±20)%及(12±8)%,两组比较t=-1.490 0,P>0.05。
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    4.IVIG抑制CBMC表达IL-2、IL-4mRNA:经PMA结合ionomycin诱导6小时后,PBMC可表达IL-2mRNA及IL-4mRNA,CBMC仅表达IL-2mRNA。PHA刺激48小时的CBMC,加入IL-2继续培养5天,再经PMA及ionomycin诱导6小时,则表达了IL-2mRNA及IL-4mRNA。对电泳后的PCR产物进行吸光度扫描,将IL-2mRNA(或IL-4mRNA)表达量与相应磷酸甘油醛脱氢酶的mRNA表达量的比值进行比较后得出一相对单位。实验组与对照组的IL-2mRNA分别为0.86±0.20[吸光度值(A)]及0.70±0.24(A),两组比较t=4.689,P<0.01。实验组与对照组的IL-4mRNA分别为0.76±0.14(A)及0.69±0.21(A),两组比较t=0.017,P<0.05。IVIG的加入明显抑制了IL-2、IL-4mRNA的表达。

    三、讨论

    本结果表明,新生儿B细胞Ig类别转换功能低下与新生儿T、B细胞的功能不成熟有关,体外新生儿B细胞在适当的T细胞辅助并补充某些细胞因子的条件下,可以活化增殖并分化成更多IgSCs细胞。IVIG的加入使脐血B细胞中IgSCs明显减少。IVIG同时抑制了3种主要的Ig同种型的释放,并不是只抑制IgGSCs及IgASCs的出现。因此,IVIG虽能抑制脐血B细胞Ig的分泌,但并未阻断脐血B细胞Ig的同种型转移。另一方面,IVIG的加入并不影响CD40在CBMC活化后的表达,却提高了CBMC膜表面CD40L的表达。结合实验中外源性重组细胞因子部分拮抗了IVIG对脐血B细胞的抑制,提示,IVIG抑制B细胞Ig释放的同时,可能产生了针对T细胞的反馈信号,刺激了CD40L表达的增加,但在B细胞上的CD40或其它共刺激信号及有关的细胞因子缺乏配合的情况下,CD40L表达的增加并无实际的意义。本研究运用RT-PCR法显示了IVIG对IL-2、IL-4mRNA的表达有明显的抑制作用。说明IVIG对蛋白质水平的两种细胞因子产生的抑制可以是由于IVIG对从转录到分泌至胞外整个阶段任一时相上的抑制。
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    本课题为国家自然科学基金资助项目

    参考文献

    1 Stohl W, Elliot JE. In vitro inhibition by intravenous immunoglobulin of human T cell-dependant B cell differentiation induced by staphylococcal superantigens. Clin Immunol Immunopath, 1996,79:122-133.

    2 Lee FK, Nahmias AJ, Spiza T, et al. Enumeration of human peripheral blood lymphocytes secreting immunoglobulins of major classes and subclasses in healthy children and adults. J Clin Immunol, 1991,11:213-218.

    (收稿:1997-09-16 修回:1998-06-20), http://www.100md.com