当前位置: 首页 > 期刊 > 《中华传染病杂志》 > 1999年第1期
编号:10242181
外周血单个核细胞与血清中HBV DNA及其变异比较
http://www.100md.com 《中华传染病杂志》 1999年第1期
     作者:郭亚兵 张继锁 侯金林 姜荣龙 杨云芬 章廉 顾小维 骆抗先

    单位:郭亚兵、侯金林、姜荣龙、杨云芬、章廉、顾小维、骆抗先 510515 广州,第一军医大学南方医院;张继锁 解放军第260医院

    关键词:

    中华传染病杂志990116 人外周血单个核细胞(PBMC)中存在HBV DNA[1]的生物学意义远未阐明。我们用动态观测PBMC中HBV DNA方法,研究PBMC中HBV DNA消长规律及其对干扰素的应答与疗效的影响。

    材料与方法

    一、病例来源

    6例慢性乙型肝炎(乙肝)患者系1994年3月~1995年2月广州南方医院传染病科住院患者,男5例,女1例,平均年龄24.4岁(10~31岁)。均经肝穿刺活检病理诊断。6例血清HBsAg(+)、HBeAg(+)、HBV DNA(+)、抗-HCV(—)。α-干扰素(Schering Plough,美国)治疗方案:3~6百万单位(MU),每周3次,皮下注射,疗程3~6个月。外周血标本于治疗前后各1次、治疗中每间隔4~6周采集1次。
, http://www.100md.com
    二、方法

    (一) PBMC分离 肝素抗凝全血5~10ml,加等量140mmol/L NaCl稀释后铺于淋巴细胞分离液上,400g离心30分钟,取中间层细胞,用5ml生理盐水洗细胞3~4次。

    (二) PBMC中HBV DNA检测 参照文献[2]方法提取细胞DNA。将细胞悬于细胞裂解液中(10mmol/L Tris.HCl pH8.2,100mmol/L EDTA pH8.0,0.5%SDS,20μg/ ml RNase),37°C 1小时,加100μg/ ml蛋白酶K,50°C3小时,以苯酚、氯仿抽提,乙醇沉淀。DNA沉淀溶于20μl ddH2O。取1μl DNA,用引物C1/C3进行PCR检测。即于标准PCR缓冲液中,加dNTP各200μmol,引物对各25pmol,总体积50μl,94°C 2分钟后加2.5U Taq DNA聚合酶。进行30~35次热循环:94°C 40秒,54°C 40秒,70°C 80秒;最后70°C 5分钟。取5μl PCR产物在2%琼脂糖凝胶中电泳,于预测相对分子质量665bp处有明显荧光带者为阳性结果。
, 百拇医药
    (三) 血清HBV DNA检测 血清DNA提取参照文献[3]方法略修改:100μl血清,加100μl裂解液(25mmol/L,2.5mmol/L EDTA,1%SDS,2mg/ml proteinase K,10μl/ml tRNA),68°C 2小时,酚和氯仿抽提,乙醇沉淀后,溶于10μl ddH2O,取5μl进行PCR检测,方法同上。

    (四) HBV前C/C区核酸序列分析 引物序列见表1。用双脱氧末端终止法对PCR产物测序。取1μl 1∶100稀释PCR C1/C3产物,用C6/C2(C区)或CSP/PC1(前C区)内引物进行第二轮PCR(条件同上),用异丙醇对PCR产物沉淀纯化。32P末端标记测序引物,按fmol测序试剂盒进行循环测序。电泳、放射自显影后,结果用DNASIS软件处理分析。

    表1 HBV前C/C区寡核苷酸引物序列 引物

, http://www.100md.com     位置

    序列(5′-3′)

    C1

    (2394-2370)R

    GGCGGAGGGAGTTCTTCTTCTAGGGGG

    C3

    (1730-1754)

    CTGGGAGGAGTTGGGGGAGGAGATT

    C6

    (2348-2330)R

    ACGGATCCTAAACAACAGTAGTTTCCGG
, 百拇医药
    C2

    (1955-1974)

    TTGCCTTCTGACTTCTTTCC

    CSP

    (1974-1955)R

    GGAAAGAAGTCAGAAGGCAA

    PC1

    (1811-1834)

    ACCATGCAACTTTTCACCTCTGC

    R:antisense

    结果
, 百拇医药
    经干扰素治疗的6例慢性乙肝患者血清及PBMC中HBV DNA动态观察结果见表2。

    表2 动态比较干扰素治疗的6例慢性乙肝患者血清与PBMC中HBV DNA 病例

    号

    INF(MU)

    ALT(U/L)

    HBeAg

    HBV DNA

    血清(PBMC)

    Ⅰ

    Ⅱ

    Ⅲ
, http://www.100md.com
    Ⅰ

    Ⅱ

    Ⅲ

    Ⅰ

    Ⅱ

    Ⅲ

    Ⅰ

    Ⅱ

    Ⅲ

    1

    0

    120

    150

    528
, http://www.100md.com
    62

    23

    +

    +

    -

    +(+)

    +(+)

    -(-)

    2

    0

    60

    360

    230

    600
, http://www.100md.com
    26

    +

    +

    -

    +(+)

    -(+)

    -(-)

    3

    0

    144

    324

    60

    30

    25
, http://www.100md.com
    +

    -

    -

    +(+)

    -(-)

    +(-)

    4

    0

    180

    396

    80

    150

    26

    +
, http://www.100md.com
    -

    -

    +(+)

    -(+)

    +(+)

    5

    0

    54

    216

    123

    250

    30

    +

    +
, 百拇医药
    -

    +(+)

    -(+)

    -(-)

    6

    0

    75

    144

    105

    94

    30

    +

    -

    -
, 百拇医药
    +(+)

    -(+)

    -(-)

    Ⅰ:治疗前, Ⅱ:治疗中, Ⅲ:治疗结束后4周内; +:进行了HBV前C或C区测序; INF:干扰素累加量

    6例血清HBV DNA于干扰素治疗平均5周(3~10周)内消失,其中2例于治疗结束后复转阳性。5例PBMC中HBV DNA平均15周(12~20周)阴转,1例始终阳性。随着治疗时间和剂量的累积,血清HBeAg阴转率增加。PBMC中HBV DNA的清除率也同样随时间和剂量的累积而增加。

    对病例4和病例1,治疗前后的PBMC中HBV前C或C基因区进行序列测定(纵向比较)。治疗前后无论前C(病例1)或C区(病例4)序列均相同。病例4治疗前同一份血清标本分离的血清和PBMC横向比较,PBMC与血清中HBV毒株C区序列有1个核苷酸不同,PBMC中为野毒株,而血清中为变异株,即nt1913位的C被A替代(氨基酸P被T替代)。PBMC中HBV前C区均相同,未见A1896终止码变异。
, http://www.100md.com
    细胞最后一次洗液,PCR检测HBV DNA均为阴性。

    讨论

    6例慢性乙肝经干扰素治疗后,4例完全反应(即ALT正常,HBeAg阴转,血清HBV DNA消失),2例部分反应(ALT波动或正常,血清HBV DNA阳性或HBeAg阳性)。HBeAg和PBMC中HBV DNA的阴转与干扰素治疗累积剂量呈正相关。因本研究病例为人为选择性,观察的例数和次数均较少,只能是观察疗效与指标等关系的大概趋势,在治疗规模与观察结果与以往报道无可比性。

    PBMC中HBV DNA与血清中HBV DNA比较,PBMC中HBV有5例在治疗结束时消失,1例(病例4)始终阳性。PBMC中HBV DNA清除平均时间为15周。提示α-干扰素可清除PBMC中HBV DNA,但较血清中的病毒清除延迟。这也从一个侧面提示干扰素治疗时间不应少于15周。治疗中5例PBMC中HBV清除迟于血清中的病毒清除时间,作为IFN疗效观察指标,动态观察PBMC中HBV DNA可能更可靠。
, 百拇医药
    PBMC中HBV DNA测序结果可初步分析为:(1) PBMC中感染的HBV与血清中不同,有二种可能:一是感染PBMC的HBV有某种选择性。有报道认为PBMC中HBV感染是通过骨髓造血干细胞的感染所致[5],而且HBV是通过PBMC表面前S1受体介导的[6]。血清中存在的HBV是病毒在不同组织中(主要在肝脏)复制的混合群体。因此也可推断,PBMC不是HBV复制的主要场所。其二,PBMC中HBV在宿主免疫压力筛选下保持相对稳定,而血清中HBV则相对易变[7],由此形成了不同于血清存在的优势毒株。(2) PBMC中HBV毒株前C区未发现变异,因此PBMC中HBV持续存在的原因可能与病毒变异相关性小。(3) PBMC中HBV在干扰素治疗前后未发生前C/C区变异,提示干扰素可能并不诱导PBMC中HBV发生变异。这一结果与干扰素治疗并不增加HBV前C变异相吻合[8]。但因观测例数较少,以上分析有待进一步验证。

    参考文献
, 百拇医药
    1 Chong JO, Jenk LB. Hepatitis B virus in lymphocytes of seronegative carriers. Lancet, 1984, 2:395-396.

    2 Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. Molecular cloning, a laboratory manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1989. 9-16.

    3 骆抗先,周荣,梁炽森,等.PCR鉴定HBsAg阴性慢性活动性肝炎中的乙型肝炎病毒感染.中华内科杂志,1991,30:21-24.

    4 章廉,冯筱榕,骆抗先,等.重组α-2b干扰素治疗慢性乙型肝炎患者临床研究。第一军医大学学报,1993,13:135-140.
, 百拇医药
    5 Romet LJL, McLane MF, Elfassi E, et al. Hepatitis B virus infection in cultured human lymphoblastoid cells. Science, 1983, 221:667-669.

    6 Pontisso P, Locasciulli N, Schiavon E, et al. Hepatitis B virus binds to peripheral blood mononuclear cells via the pre S1 protein. Hepatology, 1991, 12:203[209.

    7 Blum HE. Hepatitis B virus: significance of naturally occurring mutants. Intervirology, 1993, 35:40-50.

    8 Lok ASF, Akarca US, Greene S. Predictive value of precore hepatitis B virus mutations in spontaneous antigen clearance. Hepatology, 1995, 21:19-24.

    (收稿:1996-09-09 修回:1998-05-11), http://www.100md.com