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编号:10204097
活体脑片钙离子荧光强度的测定对脑缺血损伤的评价
http://www.100md.com 体外循环杂志 2001年第1期第3卷
     100029 首都医科大学附属北京安贞医院体外循环科 管玉龙;董培青;杨璟

    关键词:钙离子荧光强度;脑损伤

    摘要:

    目的 目的:通过应用激光共聚焦显微镜检测活体脑片Ca2+荧光强度,对脑损伤的机制进行探讨。

    方法:16只小型幼猪分别经过单纯深低温停循环(DHCA)或上腔静脉逆行灌注(RCP)90分钟后复灌120分钟。制备活体脑片,检测脑片Ca2+荧光强度,并进行组织病理和电子显微镜检查。

    结果:RCP组Ca2+荧光强度明显低于DHCA组。相关分析显示活体脑片Ca2+荧光强度与中重度嗜酸性变性有相关性(r=0.861,P<0.05)。
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    结论:Ca2+超载参与了DHCA后神经细胞的损伤过程,RCP能明显减轻Ca2+超载,对脑组织起到保护作用。 

    在累及主动脉弓部的大血管手术中,深低温停循环经上腔静脉逆行灌注(RCP)已成为一种脑保护方法渐为学者所接受,Ueda、Takamoto、Dong、Lin等均有成功的临床报告。 但有关RCP的基础研究尚不够深入,其保护机制尚未得到较公认的解释。实验研究认为Ca2+超载是脑缺血再灌注损伤的最基本原因。但由于技术因素尚未得到直接的证据。本实验应用激光共聚焦显微镜(LCSM)检测深低温停循环(DHCA)及RCP后2小时活体脑片Ca2+荧光强度,对脑损伤的机制进行探讨。

    资料与方法

    研究对象 1998年10月~12月选取16只健康小型幼猪(北京农业大学培育),体重18~20kg,随机分为两组:实验组(n=8)RCP组;对照组(n=8)DHCA组。
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    研究方法 对幼猪采取硫喷妥钠30~50mg/kg-1腹腔注射,气管切开插管,呼吸机辅助呼吸。 正中劈开胸骨建立CPB,转流降温至鼻咽温达18℃,肛温达20℃,停CPB。对照组行单纯DHCA ,实验组经上腔静脉行RCP。90分钟后恢复CPB并复温,120分钟后鼻咽温达37℃,肛温达35 ℃,停CPB。采用小脑幕上开颅术,取小脑半球组织300~500mg。摘除眼球,剥离视网膜组织。

    活体脑片的制备及Ca2+荧光强度的测定 将小脑组织、视网膜放入pH为7.4的人工脑脊液中,在4℃环境中以95%O2-5%CO2混合气体充灌5分钟,将小脑组织进行冠状切片,厚度为400±10um,立即将脑片放入人工脑脊液中在室温下孵育30分钟后移至含有5umol/L Fluo -3/AM的人工脑脊液中,室温下避光负载45分钟,洗涤2~3次后移入不含Flou -3/AM的脑脊液中孵育30分钟。使用激光共聚焦显微镜(Leica TCS-NT,德国)观察脑片的Ca2+荧光强度,使用共聚焦图象分析仪(Leica Q550IW,德国)进行定量分析。
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    对小脑组织和视网膜进行组织病理和电子显微镜检查。

    统计学处理 数据用ˉx±s表示,用SPSS10.0软件处理,采用t检验进行组间 对照分析,并对Ca2+荧光强度与组织病理进行相关分析。

    结 果

    1.活体脑片细胞内Ca2+荧光强度

    实验组和对照组小脑组织及视网膜组织的Ca2+镜下荧光显像定量分析显示实验互助Ca2+荧光强度明显低于对照组(表1)。

    表1 两组脑片Ca2+荧光强度

    小脑

, http://www.100md.com     视网膜

    实验组

    9.16±3.98***

    21.48±14.27*

    对照组

    31.97±20.59

    44.07±21.01

    注:*P<0.05***P <0.001

    2.组织病理检查

    脑组织病理改变程度不等,部分细胞可见缺血性改变。根据Greenfield's neuropathology 神经元缺血缺氧病变分型进行40倍镜下视野锥体细胞观察,并对病变锥体神经细胞进行定量 分析(病变细胞占细胞总数的百分比),结果显示与实验组相比,对照组的神经元发生更加普 遍明显的中重度嗜酸性变性(P<0.001)(表2)。
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    表2 小脑病理定量分析(%)

    空泡变形

    轻度嗜酸性变性

    中度嗜酸性变性

    重度嗜酸性变性

    实验组

    10.50±20.15**

    19.42±27.13

    3.30±12.18

    0±0#

    对照组

, 百拇医药     2.42±7.57

    20.60±25.08

    30.63±26.05

    31.82±18.35

    注:表中实验组与对照组相比,**P<0.01 #P<0.001

    3.电子显微镜检查

    小脑组织超微结构显示,实验组末梢网基本正常,粗面内质网及线粒体轻度肿胀:对照组粗 面内质网明显肿胀;广泛脱颗粒,线粒体明显肿胀,中间变空,线粒体嵴变短或减少、消失 。

    相关分析显示活体脑片Ca2+荧光强度与中重度嗜酸性变性有相关性(r=0.86,P<0.05)。
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    讨 论

    大脑是一个非贮能器官,对缺血缺氧非常敏感。DHCA后可导致线粒体不能继续合成ATP,脑内ATP水平急速下降。Usui等〔1〕证实DHCA60分钟后脑组织ATP降至基础水平的20%。 此外兴奋性氨基酸的大量释放,可造成Ca2+超载。DHCA时由于兴奋性氨基酸谷氨酸释放增加,重摄取减少,细胞外的谷氨酸浓度增加。谷氨酸作用于细胞膜上的N-甲基-D-天门 冬氨酸(NMDA)受体,Ca2+内流增加,复灌后细胞内Ca2+含量增加,激活Na+-Ca2+交换系统,导致Ca2+内流增加。同时由于DHCA时ATP合成不足,细胞膜上的Ca2+泵不能将细胞内的Ca2+转运出细胞外,且细胞器对Ca2+摄取和储存能力降低,可使胞浆内Ca2+浓度不断增加,Ca2+超载。但由于技术因素的限制, 以往的实验研究多集中于离体细胞的研究,不能完全反映脑组织的实际状况。本组实验中首 次采用激光共聚焦显微镜检查,直接检测采用活体脑片Ca2+荧光强度,实验显示活体 脑片Ca2+荧光强度与脑组织损伤程度相关,因而证实Ca2+超载参与了DHCA后脑损伤过程。
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    RCP脑保护在主动脉瘤特别是在主动脉弓部动脉瘤外科治疗中的应用从90年代Ueda〔2〕 文章发表之后得到了较为广泛的重视及临床应用。但仍有些学者则对RCP是否能提供有效的脑灌注持怀疑态度,部分临床效果观察表明RCP能明显延长停循环的安全时间,有RCP达13 5分钟后神经系统无并发症的报道。

    本组的前期实验〔3〕在动物的灌注血液中注入同位素99mTc-ECD,逆行灌注3分钟后脑γ显像显示核素在大脑、小脑及延髓,各处分布均匀。近期采用眼底血管荧光造影 (FFA)和彩色多普勒超声波检查对RCP期间的视网膜血管进行观测,发现在RCP期间,眼底血管存在明确的血液供应。由于眼底血管来源于脑内循环系统,因而直接证实RCP对脑组织的 血液灌注〔4〕。Pagano等〔5〕在3例手术患者的灌注血液中加入99mT c-HMPAO,使用便携式γ照相机拍照,时间活性曲线显示在所有病例的双侧大脑半球血液灌注均匀。
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    我们早期对临床病人观察〔3〕发现RCP期间灌注5、10、15、20、25分钟时,检测入脑血与出脑血其氧含量存在明显的差异。恢复循环后,RCP组血浆MDA含量在复温后显著低于 DHCA组。ESR波谱O/S比值无明显增高,自由基的相对含量增加不明显。血浆乳酸低于DHCA组 。在动物实验中RCP2h复灌后的颈静脉血乳酸含量与DHCA组相比有显著性差异。近期实验中R CP组Na+-K+ ATP酶活力在复灌后保持了较高的水平,说明RCP能很好地提供血液供应,使线粒体不断地合成ATP,维持细胞的功能。Saitou等〔6〕在实验中使用中性红作为pH 示踪染色发现RCP组脑皮层组织pH为7.15±0.18,而DHCA组为6.46±0.13。这些实验研 究均证明RCP维持了逆灌期间的有氧代谢,减轻了酸中毒。

    在体外循环快速降温时脑内温度的不均匀是造成脑损伤的重要原因,因而停循环期间脑内温度有可能逐渐回升。Juvoven等〔7〕的实验RCP组动物在逆灌期间硬膜外温度明显低于DHCA组,Usui等〔8〕的实验中DHCA期间脑内温度逐渐升高(20.4℃~22.7℃±0.7℃),而RCP则维持了恒定的温度。Shanma等〔8〕临床研究同样证实充分有效均匀的 脑内低温具有确切的脑保护效果。
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    采用RCP时,逆向血流不断冲洗动脉血管,明显减少了各种微栓的气栓进入动脉血管造成脑 栓塞的可能性,并且减少了钳夹动脉造成的动脉损伤。Yerlioglu等〔9〕在实验动物 的血液循环中加入直径250~750um的聚苯乙烯微粒后进行顺行或逆行脑灌注,再观察神经系 统的功能。结果发现顺灌组动物的神经功能低下,SVC压力低于40mmHg动物的神经功能良好 。脑组织病理检查发现RCP组动物脑血管床内沉积的微粒数明显低于顺灌组。

    本组实验首次应用LCSM直接检测活体脑片Ca2+荧光强度,证实RCP组脑片Ca2+ 荧光强度明显低于DHCA组,同时病理及电子显微镜检查均显示DHCA组神经细胞存在较严重的损伤,证实RCP能明显减轻Ca2+超载,对神经细胞起到保护作用。

    结 论

    Ca2+超载参与了DHCA后神经细胞的损伤过程,RCP能明显减轻Ca2+超载,对脑组织起到保护作用。
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    参考文献

    1.Usui A,Oohara K,Liu T,et al.Comparative experimental study betwe en retrograde cerebral perfusion and circulatory arrest.J Thorac Cardiovasc Surg ,1994,107,1228~1236.

    2.Ueda Y,Miki S,Kusuhara K,et al.Surgical treatment of aneurysm of disse ction involving the ascending aorta and aortic arch,utilizing circulatory arrest and retrograde cerebral perfusion.J Cardiovasc Surg(Torino),1990,31,553~558.
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    3.董培青大血管手术的脑保护 见:胡小琴主编心血管麻醉及体外循环北京:人民卫生出版社,1997.489~498.

    4.Dong PQ,Guan YL,Yang J,et al.Fundus microvascular flow monitoring dur ing retrograde cerebral perfusion:an experimental study.Ann Thorac Surg,2000(in press).

    5.Pagano D,Boivin CM,Foroqui MH,et al.Retrograde perfusion through th e superior vena cava perfuses the brain in human beings.J Thorac Cardiovasc Surg ,1996,111:270~272.

    6.Saitou H,Watanabe T,Zhang JW,et al.Regional tissue blood flow and p H in the brain during deep hypothermic retrograde brain perfusion.J Surg Res,199 7,72:135~140.
, 百拇医药
    7.Juvonen T,Zhang N,Wolfe D,et al.Retrograde cerebral perfusion enhan ces cerebral protection during prolonged hypothermic circulatory arrest:a study in a chronic porcine model.Ann Thorac Surg,1998,66:38~50.

    8.Sharma R,Choudhary SK,Mohan MR,et al.Neurological evaluation and in telligence testing in the child with operated congenital heart disease.Ann Thora c Surg,2000,70:575~581.

    9.Yerlioglu ME,Wolfe D,Mezrow CK,et al.The effect of retrograde cereb ral perfusion after particulate embolization to the brain.J Thorac Cardiovasc Su rg,1995,110:1470~1485., 百拇医药