铅对大鼠海马神经细胞Ca2+浓度、Ca2+-ATP酶、Na+-ATP酶活性的影响
作者:孙黎光 刘素媛 邢伟 石利德
单位:孙黎光(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));刘素媛(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));邢伟(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));石利德(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001))
关键词:
卫生毒理学杂志000409 已知脑海马区是学习和记忆的重要脑区,尤其LTP被认为是学习和记忆的功能单位。许多实验证明体外急性染铅时,神经细胞LTP过程中Ca2+浓度明显升高,Ca2+-ATP酶活性降低[1]。在慢性染铅动物体内,铅对上述指标的影响还没有报道,本研究用慢性染铅Wistar大鼠为动物模型,予观察铅对脑海马神经细胞Ca2+,Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性及LTP的影响。
, 百拇医药
1 材料与方法
1.1 材料
Wistar大鼠由本校实验动物部提供。高速离心机为Dupout公司产品;液闪仪为BeckmanLS-180型;F-2000荧光光度计为日立产品;Fura-2/Am,ATP购自Sigma。其余试剂为分析纯。
1.2 方法
1.2.1 动物模型 选择断乳后Wistar大鼠40只,体重为30g左右。分成2组,对照组饮蒸溜水,染铅组饮0.2%醋酸铅的水。待大鼠长至300g,用高频刺激诱发LTP后,测定海马神经细胞的Ca2+i,Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性。
1.2.2 血铅浓度测定 原子吸收石墨炉法。
, 百拇医药
1.2.3 高频刺激诱发LTP[2]
将刺激电极插入内嗅皮层,刺激穿通路纤维,将记录电极插入海马齿状回,引导单一刺激诱发群体峰电位(Population Spike)做基线记录后,给高频刺激5min,观察LTP改变。
1.2.4 神经细胞内[Ca2+]i测定 用Fura-2/Am荧光标记法[2]。
1.2.5 Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性测定 按徐友涵[3]方法。
1.3 统计方法
所有计量资料用t检验及相关分析。
2 结果
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2.1 染铅鼠血铅浓度及脑海马神经细胞LTP过程中[Ca2+]i改变
本研究中用0.2%醋酸铅水喂养大鼠后,血铅浓度明显高于正常。脑海马神经细胞内[Ca2+]i也升高,统计学上有意义。见表1。
表1 大鼠海马神经细胞血铅浓度及Ca2+i
组别
血铅浓度μmol/L
[Ca2+]i nmol/L
对照组
0.25±0.12
(n=13)
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108.81±26.85
(n=15)
染铅组
3.30±0.56
(n=11)*
265.14±53.61
(n=12)* *
与对照组比较*P<0.01;* *P<0.01
经相关系数分析,神经细胞[Ca2+]i与血铅浓度呈仍显著正相关(r=0.90 P<0.01)。
, 百拇医药
2.2 染铅鼠神经细胞LTP过程中Ca2+-ATP酶和Na+-ATP酶活性变化
染铅鼠脑海马神经细胞膜Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性亦随着[Ca2+]i升高而增加,并有统计学意义。见表2。
表2 大鼠海马神经细胞Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性(nmol Pi mg-1min-1)
组别
Ca2+-ATP酶活性
Na+-ATP酶活性
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对照组
265.17±28.44
(n=12)
829.10±89.25
(n=13)
染铅组
355.62±41.16
(n=13)*
1 332.19±290.10
(n=13)* *
与对照组比较P<0.01;* *P<0.01
, http://www.100md.com
经相关系数分析证明,Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性亦与[Ca2+]i呈极显著正相关。(r=0.835 P<0.01,r=0.801 P<0.01)。
2.3 染铅鼠海马LTP变化
对照组(n=12)有10只产生了LTP,染铅组(n=11)有2只产生LTP,两组间发生率下降差异显著(P<0.01)。并且两组间群体峰电位(PS)平均幅值下降差异显著(P<0.05)。证明铅确实可使LTP发生改变。
3 讨论
铅是环境中一种重要的神经毒物,对青少年学习、记忆及心理、行为的影响引起人们的极大关注。但铅对中枢神经系统的致毒机理仍不清楚。在分子水平研究上主要集中在铅与Ca2+的关系上。Ca2+广泛分布于人体的细胞与体液中,细胞内游离Ca2+浓度的改变是细胞生理生化功能的重要物质基础,也是多种受体激动后信号传递的中心环节。已经证明染铅鼠脑神经细胞内游离Ca2+浓度明显升高[2],但其机制不清。Ca2+-ATP酶存在于胞膜及内质网,肌浆网上,是胞浆内Ca2+向胞外或内质网转运的重要载体。质膜Ca2+-ATP酶是一个140KD蛋白质每水解一分子ATP可泵出一分子的Ca2+。体外实验证明,急性染铅后Ca2+-ATP酶活性降低,即胞浆内Ca2+向外转运受阻,可能是胞浆Ca2+升高的原因之一。本研究中,大鼠慢性染铅后,胞浆Ca2+浓度升高,Ca2+-ATP酶活性亦升高。胞浆Ca2+浓度升高可能有两方面原因:一是Ca2+流入量增加;Kaczmerek[4]研究显示:PKC活性升高可激活膜上钙通道使Ca2+流入增多。我室已证明染铅后可引起大鼠脑海马神经细胞PKC活性升高[2]。PKC激活后可引起内质网、线粒体内Ca2+释放,导致胞浆Ca2+浓度升高。另外胞内Ca2+流出减少也是造成胞浆Ca2+浓度升高的原因之一。Ca2+-ATP酶可将胞浆内Ca2+泵出细胞外或泵入内质网,是胞浆Ca2+流出的主要通道。本研究Ca2+-ATP酶活性增高,是由于在体长期染铅,胞浆Ca2+浓度持续升高,刺激Ca2+-ATP酶合成量增加,活性升高,可将细胞内Ca2+泵出胞外,是一种代偿机制。Na+-ATP酶活性亦明显升高。可能是由于胞内Ca2+升高不仅使Ca2+-ATP酶活性代偿升高,另外膜上还有Na+、Ca2+交换器,可使膜外3个Na+离子顺浓度差流入胞内,并使胞内一个Ca2+逆浓度差泵出,结果使胞内Na+浓度升高。Na+-ATP酶每水解一分子ATP,同时泵出3个Na+,泵入2个K+。这样就维持细胞外高钠、细胞内高钾的特殊离子梯度。也是一种适应长期染铅造成胞内高Ca2+状态的代偿机制,使胞浆Ca2+浓度不至于过高,保证细胞内钙稳态。Ca2+浓度的变化是Ca2+跨膜转运及细胞内钙池摄取、释放等动态平衡改变的总结果[5],有报导指出在急性染铅时内质网(一种钙池)膜上IP3受体激活是胞浆Ca2+浓度升高的主要原因[6],在慢性染铅鼠内,IP3受体及Na+、Ca2+交换器,及各种钙通道是如何改变,还不清楚,有待于进一步观察。
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国家自然科学基金资助项目(39070454)
参考文献
1,Bettaiya R,Yallapragada P R, Hall E, et al. Ecotoxicol Environ Saf.1996,33(2):157.
2,孙黎光,邢 伟,刘素媛,等.卫生毒理学杂志,1997,11(3):180.
3,徐友涵,宋FDA9华,等.生物化学与生物物理进展,1986,4:64
4,Kaczmerek Lk. Trends Neurosci,1987,10:30.
5,陈松海,韩启德.生理科学进展,1993,24(1):10.
6,Timothy J Simons.Neurotoxicology,1993,14(2-3):77.
(收稿:1999-04-10), 百拇医药
单位:孙黎光(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));刘素媛(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));邢伟(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001));石利德(中国医科大学基础医学院生化教研室 (沈阳 110001))
关键词:
卫生毒理学杂志000409 已知脑海马区是学习和记忆的重要脑区,尤其LTP被认为是学习和记忆的功能单位。许多实验证明体外急性染铅时,神经细胞LTP过程中Ca2+浓度明显升高,Ca2+-ATP酶活性降低[1]。在慢性染铅动物体内,铅对上述指标的影响还没有报道,本研究用慢性染铅Wistar大鼠为动物模型,予观察铅对脑海马神经细胞Ca2+,Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性及LTP的影响。
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1 材料与方法
1.1 材料
Wistar大鼠由本校实验动物部提供。高速离心机为Dupout公司产品;液闪仪为BeckmanLS-180型;F-2000荧光光度计为日立产品;Fura-2/Am,ATP购自Sigma。其余试剂为分析纯。
1.2 方法
1.2.1 动物模型 选择断乳后Wistar大鼠40只,体重为30g左右。分成2组,对照组饮蒸溜水,染铅组饮0.2%醋酸铅的水。待大鼠长至300g,用高频刺激诱发LTP后,测定海马神经细胞的Ca2+i,Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性。
1.2.2 血铅浓度测定 原子吸收石墨炉法。
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1.2.3 高频刺激诱发LTP[2]
将刺激电极插入内嗅皮层,刺激穿通路纤维,将记录电极插入海马齿状回,引导单一刺激诱发群体峰电位(Population Spike)做基线记录后,给高频刺激5min,观察LTP改变。
1.2.4 神经细胞内[Ca2+]i测定 用Fura-2/Am荧光标记法[2]。
1.2.5 Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性测定 按徐友涵[3]方法。
1.3 统计方法
所有计量资料用t检验及相关分析。
2 结果
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2.1 染铅鼠血铅浓度及脑海马神经细胞LTP过程中[Ca2+]i改变
本研究中用0.2%醋酸铅水喂养大鼠后,血铅浓度明显高于正常。脑海马神经细胞内[Ca2+]i也升高,统计学上有意义。见表1。
表1 大鼠海马神经细胞血铅浓度及Ca2+i
组别
血铅浓度μmol/L
[Ca2+]i nmol/L
对照组
0.25±0.12
(n=13)
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108.81±26.85
(n=15)
染铅组
3.30±0.56
(n=11)*
265.14±53.61
(n=12)* *
与对照组比较*P<0.01;* *P<0.01
经相关系数分析,神经细胞[Ca2+]i与血铅浓度呈仍显著正相关(r=0.90 P<0.01)。
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2.2 染铅鼠神经细胞LTP过程中Ca2+-ATP酶和Na+-ATP酶活性变化
染铅鼠脑海马神经细胞膜Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性亦随着[Ca2+]i升高而增加,并有统计学意义。见表2。
表2 大鼠海马神经细胞Ca2+-ATP酶,Na+-ATP酶活性(nmol Pi mg-1min-1)
组别
Ca2+-ATP酶活性
Na+-ATP酶活性
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对照组
265.17±28.44
(n=12)
829.10±89.25
(n=13)
染铅组
355.62±41.16
(n=13)*
1 332.19±290.10
(n=13)* *
与对照组比较P<0.01;* *P<0.01
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经相关系数分析证明,Ca2+-ATP酶及Na+-ATP酶活性亦与[Ca2+]i呈极显著正相关。(r=0.835 P<0.01,r=0.801 P<0.01)。
2.3 染铅鼠海马LTP变化
对照组(n=12)有10只产生了LTP,染铅组(n=11)有2只产生LTP,两组间发生率下降差异显著(P<0.01)。并且两组间群体峰电位(PS)平均幅值下降差异显著(P<0.05)。证明铅确实可使LTP发生改变。
3 讨论
铅是环境中一种重要的神经毒物,对青少年学习、记忆及心理、行为的影响引起人们的极大关注。但铅对中枢神经系统的致毒机理仍不清楚。在分子水平研究上主要集中在铅与Ca2+的关系上。Ca2+广泛分布于人体的细胞与体液中,细胞内游离Ca2+浓度的改变是细胞生理生化功能的重要物质基础,也是多种受体激动后信号传递的中心环节。已经证明染铅鼠脑神经细胞内游离Ca2+浓度明显升高[2],但其机制不清。Ca2+-ATP酶存在于胞膜及内质网,肌浆网上,是胞浆内Ca2+向胞外或内质网转运的重要载体。质膜Ca2+-ATP酶是一个140KD蛋白质每水解一分子ATP可泵出一分子的Ca2+。体外实验证明,急性染铅后Ca2+-ATP酶活性降低,即胞浆内Ca2+向外转运受阻,可能是胞浆Ca2+升高的原因之一。本研究中,大鼠慢性染铅后,胞浆Ca2+浓度升高,Ca2+-ATP酶活性亦升高。胞浆Ca2+浓度升高可能有两方面原因:一是Ca2+流入量增加;Kaczmerek[4]研究显示:PKC活性升高可激活膜上钙通道使Ca2+流入增多。我室已证明染铅后可引起大鼠脑海马神经细胞PKC活性升高[2]。PKC激活后可引起内质网、线粒体内Ca2+释放,导致胞浆Ca2+浓度升高。另外胞内Ca2+流出减少也是造成胞浆Ca2+浓度升高的原因之一。Ca2+-ATP酶可将胞浆内Ca2+泵出细胞外或泵入内质网,是胞浆Ca2+流出的主要通道。本研究Ca2+-ATP酶活性增高,是由于在体长期染铅,胞浆Ca2+浓度持续升高,刺激Ca2+-ATP酶合成量增加,活性升高,可将细胞内Ca2+泵出胞外,是一种代偿机制。Na+-ATP酶活性亦明显升高。可能是由于胞内Ca2+升高不仅使Ca2+-ATP酶活性代偿升高,另外膜上还有Na+、Ca2+交换器,可使膜外3个Na+离子顺浓度差流入胞内,并使胞内一个Ca2+逆浓度差泵出,结果使胞内Na+浓度升高。Na+-ATP酶每水解一分子ATP,同时泵出3个Na+,泵入2个K+。这样就维持细胞外高钠、细胞内高钾的特殊离子梯度。也是一种适应长期染铅造成胞内高Ca2+状态的代偿机制,使胞浆Ca2+浓度不至于过高,保证细胞内钙稳态。Ca2+浓度的变化是Ca2+跨膜转运及细胞内钙池摄取、释放等动态平衡改变的总结果[5],有报导指出在急性染铅时内质网(一种钙池)膜上IP3受体激活是胞浆Ca2+浓度升高的主要原因[6],在慢性染铅鼠内,IP3受体及Na+、Ca2+交换器,及各种钙通道是如何改变,还不清楚,有待于进一步观察。
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国家自然科学基金资助项目(39070454)
参考文献
1,Bettaiya R,Yallapragada P R, Hall E, et al. Ecotoxicol Environ Saf.1996,33(2):157.
2,孙黎光,邢 伟,刘素媛,等.卫生毒理学杂志,1997,11(3):180.
3,徐友涵,宋FDA9华,等.生物化学与生物物理进展,1986,4:64
4,Kaczmerek Lk. Trends Neurosci,1987,10:30.
5,陈松海,韩启德.生理科学进展,1993,24(1):10.
6,Timothy J Simons.Neurotoxicology,1993,14(2-3):77.
(收稿:1999-04-10), 百拇医药