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编号:10270539
系统性红斑狼疮患者外周血辅助性T淋巴细胞表型分析及与疾病活动性的相关性
http://www.100md.com 《中华风湿病学杂志》 2000年第6期
     作者:王来 何培根

    单位:王来(武汉,同济医科大学附属同济医院风湿科 430030);何培根(武汉,同济医科大学附属同济医院风湿科 430030)

    关键词:

    中华风湿病学杂志000620

    系统性红斑狼疮(SLE)患者免疫系统的主要异常是依赖于T细胞的B细胞功能亢进,产生大量 的自身抗体和免疫复合物[1],根据产生的细胞因子的不同,人CD4+T细胞(辅助 型T细胞)至少可分为三种功能亚型:Th1细胞生成白细胞介素-2(IL-2),干扰素-γ(IFN -γ)和肿瘤坏死因子-α(TNF-α);Th2细胞生成IL-4、IL-5、IL-6和IL-10;Th0细 胞可生成两类细胞因子[2]。本文运用流式细胞仪采用三色荧光标记分析SLE患者外 周血单个核细胞(PBMC)的CD4,CD25以及CD30三种表面抗原的表达,试图通过这些表面标记 反映Th细胞的量的变化,激活状态以及活化细胞是否分泌Th2细胞因子,并探讨这些表达与S LE疾病活动性的相关性。
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    1 资料与方法

    1.1 临床资料:23例SLE患者男性1例,女性22例,年龄13~58岁,病例组均受治于同济医 院内科,根据ACR标准确定诊断[3],患者均未合并炎性感染,其中10例患者已接受 激素治疗(强的松1~2 mg.kg-1.d-1,口服),13例患者尚未接受任何治疗 。10名健康献血者作为正常对照组,男性2名,女性8名,年龄22~31岁。

    1.2 标本处理:静脉采集的外周血(肝素抗凝)在4 h内进

    行分析,首先经Ficoll-Hypaque淋巴细胞分离液(pharmacia)离心分层,取出中间层的PBMC 置于5 ml Falcon试管,每试管的100 μl细胞悬液中含大约105个细胞,采用三色免疫荧 光染色。
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    1.3 细胞染色:20 μl异硫氰酸荧光素(FITC)标记的小鼠抗人CD30单克隆抗体,20 μl藻 红蛋白(PE)标记的小鼠抗人CD25单克隆抗体和20 μl Cy-chrom标记的小鼠抗人CD4单克隆 抗体(购自PharMingen公司)分别加入待测试管,相应标记的小鼠IgG亚型抗体作为阴性对照 。试管置于4 ℃暗处反应30 min后用磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4,含1%叠氮钠和0.5%白蛋 白)清洗离心,吸去上清液后用300 μl 1%多聚甲醛固定待用。

    1.4 流式细胞仪分析:运用FACScan流式细胞仪(Becton Dickinson)进行细胞表面抗原分 析,仪器提供前向散射光(FSC),侧向散射光(SSC)以及不同波长的荧光(FL1,FL2,FL3)等 参数,在FSC-SSC二维点图上确定出淋巴细胞的分布,随后在FL1-FL2及FL2-FL3二维点图 上进行细胞各表面标记的分析,每份标本分析10 000个细胞。

    1.5 SLEDAL评分:SLE疾病活动性运用SLEDAL标准评分[4]:中枢神经系统表现( 癫痫、精神病、器质性脑病、视觉障碍、颅神经病变、狼疮性头痛、脑血管意外)各计8分, 血管炎计8分,关节炎和肌炎各计4分,肾脏表现(管型尿、血尿、蛋白尿、脓尿)各计4分, 新发皮疹、脱发和黏膜溃疡各计2分,胸膜炎和心包炎各计2分,低补体血症和DNA结合率增 高各计2分,发热、血小板减少和白细胞减少性血症各计1分,总分105分。
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    1.6 统计学处理:分别计算SLE患者组与正常对照组细胞阳性率的中间值,下25%至上25% 的区间值用以反映变化范围,运用Mann-Whitney检验进行SLE组与对照组的表面抗原比较; 运用Spearman检验进行表面抗原与疾病活动性SLEDAI评分的相关性分析,设定P<0.05 为统计学上有显著意义。

    2 结 果

    2.1 细胞表面抗原表达:病例组及正常对照组的血液标本在采集后及时加以染色分析以尽 可能反映细胞在体内的状况。SLE患者标本的流式细胞仪分析图谱FL1-FL3和FL2-FL3二维 点图显示单个细胞水平上淋巴细胞的三种表面抗原的表达。经统计分析SLE患者PBMC中CD4 +细胞较正常对照组显著减少(P<0.05),二者的中间值分别为36.2%和30.6%。SLE 组的CD4+CD25+细胞的百分率中间值为8.9%,较正常组的7.0%显著增高,P<0 .05。正常组与SLE组的PBMC几乎均无CD4+CD30+细胞表达,也未见CD4-CD30+ 细胞。
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    2.2 SLEDAI评分:23例SLE患者中,22例伴有肾脏病变,20例伴有关节炎和/或肌炎,20例 伴低补体血症和/或DNA结合率增高,18例有皮疹和/或脱发和/或黏膜溃疡,16例伴发热,14 例外周血中血小板减少和/或白细胞减少,13例伴有胸膜炎和/或心包炎,4例合并血管炎,4 例合并中枢神经系统病变。患者的临床疾病活动性SLEDAI评分范围为14~38分,中间值为24 分。

    2.3 相关性分析:SLE患者CD4+CD25+细胞阳性率与患者SLEDAI的评分有显著的相关 性(r=0.433 0,P<0.05),CD4细胞阳性率与SLEDAI无显著相关性(r=0.1 24 4,P>0.5)。

    3 讨 论

    SLE患者外周血中淋巴细胞亚型分布反映了机体免疫调节状态,其变化可以导致SLE的免疫异 常。本文结果证实了SLE CD4+辅助性T细胞数目减少,这是T细胞反应性自身抗体作用的 结果,免疫激活引起的细胞死亡也可能减少细胞数。CD25是IL-2受体的α链,是IL-2的低 亲和力受体,表达于活化的T细胞、B细胞和单核细胞[5],CD4+细胞的CD25表达 显著增高反映了高水平的免疫系统激活状态;它与疾病活动性存在的显著相关性更说明了SL E的病理性质,CD4+CD25+细胞百分率可视为疾病活动性的标记之一。Wolf等[6 ]的研究报道SLE患者血清中可溶性CD25(sCD25)显著增高,并建议作为疾病进展的观察指 标。
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    活化的T细胞可以表达多种表面分子,其中,CD30抗原被认为是产生Th2型细胞因子的一类分 化和/或活化T淋巴细胞的标记。CD30是TNF受体超家族中的一类细胞因子受体,表达于产生T h2型细胞因子的活化的CD4+细胞表面[7,8],有关细胞因子的研究提示,Th2细 胞因子生成增多参与SLE的病理过程[9,10],这些因子可以促进分泌自身抗体的B 细胞的活化和分化[11]。SLE患者血清中可溶性CD30(sCD30)较正常对照组明显增高 ,而且与SLE的活动性相关[12],说明体内存在CD30高表达的细胞。然而本文结果 显示活化的CD4+细胞并未表达CD30,CD4-的淋巴细胞(CD8+细胞)也无CD30的表达 ,其原因可能是外周循环中表达并释放CD30的细胞局限于机体发生炎性病变的微环境中。此 外,文献[13]报道正常外周血淋巴细胞一般不表达CD30,T细胞只有经体外有丝分裂原(如 PHA,抗CD3抗体等)或适当的细胞因子(如IL-2和IL-4)刺激活化之后才表达CD30,CD30也 可能由其他非T细胞分泌。酶点法研究SLE患者PBMC,发现Th2细胞因子(IL-6和IL-10)主要 由CD14+的单核/巨噬细胞分泌[9]
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    T细胞的激活程度反映了SLE的活动性,活化T细胞生成Th1/Th2细胞因子平衡失调,与自身抗 体产生过多密切相关,参与SLE疾病发生及进展。以抑制淋巴细胞活化,调节Th1/Th2细胞因 子失衡为目的的免疫调节制剂的应用,将为治疗SLE提供新的有效手段。

    参 考 文 献

    1,Mills JA.Systemic lupus erythematosus.N Engl J Med,1994,330:1 871-1879.

    2,Romagnani S.Lymphokine production by human T cells in disease states.Ann Rev Immunol,1994,12:227-257.

    3,Tan EM,Cohen AS,Fries JF,et al.The 1982 revised criteria for the classification of systemic lupus erythematosus.Arthritis Rheum,1982,25:1271 -1277.
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    4,Bombardier C,Gladman DD,Urowitz MB,et al.Derivation of the SL EDAI:a disease activity index for lupus patients.Arthritis Rheum,1992,35:630-64 0.

    5,Minami Y,Kono T,Miyazaki T,et al.The IL-2 receptor complex:i ts structure, function and target genes.Ann Rev Immunol,1993,11:245-268.

    6,Wolf RE,Brelsford WG.Soluble interleukin-2 receptors in syst emic lupus erythematosus.Arthritis Rheum,1988,31:729-735.
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    7,del Prete G,de Carli M,Almerigogna F,et al.Preferential expr ession of CD30 by human CD4+ T cells producing Th2-type cytokines.FASEB J,19 95,9:81-86.

    8,del Prete G,de Carli M,D′Elios MM,et al.CD30-mediated signa ling promotes the development of human T helper type 2-like T cells.J Exp Med,1 995,182:1655-1661.

    9,Hagiwara E,Gourley MF,Lee S,et al.Disease severity in patient s with systemic lupus erythematosus correlates with an increased ratio of interl eukin-10:interferon-γ-secreting cells in the peripheral blood.Arthritis Rheu m,1996,39:379-385.
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    11,Kitani A,Hara M,Hirose T,et al.Heterogeneity of B cell responsiveness to interleukin 4,interleukin 6 and low molecular weight B cell growth factor in discrete stages of B cell activation in patients with systemic lupus erythemato sus.Clin Exp Immunol,1989,77:31-36.

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    13,Spinozzi F,Agea E,Piattoni S,et al.Lack of correlation between membra ne CD30 expression and cytokine secretion pattern in allergen-primed naive cord blood T cell lines and clones.Scand J Immunol,1997,45:417-422.

    收稿日期:2000-03-14, http://www.100md.com