糙皮侧耳真菌的研究进展
作者：姜自彬 魏学彦 曹锦花
单位：姜自彬 魏学彦济南军区药检所(济南250022)；曹锦花 山东医科大学生化制药教研究室
关键词：糙皮侧耳；化学成分；药理作用
中草药/990132 摘 要 糙皮侧耳是民间常用食用菌，含多种氨基酸、多肽、酶及其抑制剂、凝集素和多糖等，具有抗肿瘤、抗氧化、促进免疫及降胆固醇等多种作用，值得深入研究。
糙皮侧耳Pleurotus ostreatus(Jacq.ex Fr.)Quél(简称PO)系担子菌纲口蘑科真菌，别名平菇、北风菌、青蘑、桐子菌、粗皮侧耳等，是民间常用食用菌，营养价值较高，同时具有一定的药用价值。为便于对其进行深入的开发研究，现对近年来其化学成分、药理作用等方面的进展情况进行综述。
1 化学成分
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1.1 无机元素：通过比较侧耳菌与落叶松蕈Agaricus中无机元素的含量，发现As不在PO中聚集，PO中K、P含量低于落叶松蕈〔1〕。测定了PO中的无机元素，含量较高的为：K、P、Ca，含量较少的有：Fe、Zn、Cu、Mn、V，重金属有Cd、Hg〔2〕。
1.2 氨基酸：对子实体中游离氨基酸进行分析，除N-Δ-乙酰-L-鸟氨酸外，还检测到33种氨基酸，其中丙氨酸、谷氨酸、鸟氨酸中氮的含量占全部游离氨基酸的40%。
1.3 多肽：由子实体中得到一种对食欲有抑制作用的糖肽，分子量为70 000～90 000，pI为8.2～9.2，含有2.2%～3.0%的多糖〔3〕。
1.4 酶：从培养液中得到苯酚氧化酶(phenol oxidase)，可氧化间、对、邻位具有不同取代基的苯酚，底物取代基方向不同，氧化机制也不一样，疏电子基团阻碍底物氧化，释电子基团可促进底物氧化〔4〕。
, 百拇医药
由菌丝体中分离出抗坏血酸氧化酶，总产率为13%，分子量为94 000，SDS-PAGE显示该酶由两个46 000的亚基组成。在37℃和pH 5.2时活性最佳，对L-抗坏血酸的Km是0.48 mmol/L。氰化物和CO处理后的光谱改变表明该酶为血色素蛋白，每摩尔酶含2 mol血色素〔5〕。
从PO中得到产率为21.4%的酶glyoxalase Ⅰ，分子量为34 000，SDS-PAGE显示由两个相同的17 000的亚基组成，1H-NMR分析该酶可催化分子内的质子转移〔6〕。
从子实体中分离出属于RNase T1家族的guanylic acid特异性RNase，在pH 8.0时活性最强，热稳定性比RNase T1强，该酶含有101个氨基酸，其中6个为半胱氨酸。其分子量为10 800，在二硫键的位置和稳定性方面，与RNase T1家族中其它成员不同〔7〕。
, http://www.100md.com
从菌丝体中纯化出蛋白激酶C，SDS-PAGE测得分子量为68 000〔8〕。
从PO中发现一种需H2O2的对Renazol亮蓝R脱色的酶，该酶在pH 3.5～4.0时活性最大，其活性可被Na2S2O5、NaCl、半胱氨酸抑制，H2O2浓度大于154 mmol/L时也能抑制其活性〔9〕。
PO提取液经PAGE发现两条具有漆酶(laccase)活性的色带，为单聚体，分子量为64 000。该酶含有两个极性基团，pK值分别为5.60～5.70、6.70～6.85，这两个基团对维持其活性有重要作用〔10〕。
从PO中纯化得到总产率为23.8%的D-葡萄糖氧化酶(D-glucose oxidase)，分子量为290 000，SDS-PAGE显示该酶含有4个70 000的亚基。其辅基是核黄素(flavin)，在50 ℃、pH 5.5～6.0时活性最佳，对D-葡萄糖的Km值是1.34 mmol/L，其活性可被HgCl2完全抑制〔11〕。
, 百拇医药
从培养液中得到藜芦醇氧化酶(VAO)，为糖蛋白，以FAD为辅基。4位有甲氧取代基的芳香醇是其较好的底物，肉桂醇可被VAO迅速氧化，松柏醇则氧化较慢。该酶表观熔点60 ℃，对热中度稳定〔12〕。
1.5 酶抑制剂：用从Hamster鼠的卵细胞得到的3-羟基-3-甲基戊二酰基(HMG)CoA还原酶，发现PO中存在HMG CoA还原酶抑制剂mevinolin，并用TLC、HPLC和MS进一步证实〔13〕。后又发现抑制剂lovastatin在子实体形成期间出现，可在营养菌丝体、原基和子实体的不同部分测得。
从子实体中纯化出特异性的血清蛋白酶的抑制剂IA-1、IA-2，分子量为8 300、8 200。二者均为酸性多肽，各含72个氨基酸，其N-末端氨基酸被乙酰化封闭。IA-1的12，15位为天冬氨酸和谷氨酸，IA-2则为甘氨酸和天冬氨酸。用羧肽酶Y对IA-1处理则完全失去抑制活性，用HBr使IA-1的Met39-Pro40和Met41-Lys42断裂，用羟胺使IA-2降解，则二者均无活性，说明整个抑制剂分子都参与了活性的发挥〔14〕。
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1.6 凝集素(agglutinin)：从子实体中纯化出一种凝集素，可与一种磷酸酶相互作用而增强其活性，该凝集素的这种性质可被半乳糖阻断，表明与磷酸酶的反应是在凝集素的活性位点进行的〔15〕。
1.7 多糖：从PO中得到含D-半乳糖、D-甘露糖、L-果糖的杂聚糖，其基本骨架是(1→6)-D-半乳糖多聚体，此多糖含大量的D-甘露吡喃糖，并通过O-3和O-2与主链相连，该糖的构型是α-D型〔16〕。
由子实体中得到不溶于碱的β-D-葡聚糖，含有1→3连接的β-D-吡喃葡萄糖片断。该糖含7%的蛋白质，可延长易受细菌感染的小鼠的存活期〔17〕。
1.8 其它：对培养基中细胞外维生素作了研究，发现PO不能合成Vit B12，培养基的pH和组成明显影响菌丝体中Vit B1、B5、B7的含量，对B2、B6影响较小，在指数生长后期，B5、B7特别是B6分泌较多，B1、B2只存在于细胞中。
, 百拇医药
用色谱法鉴定了8～20个碳原子的脂肪酸，其中大部分是不饱和脂肪酸，油酸含量最高，为56%。用毛细管气相色谱法检测了PO中总的脂肪酸，主要脂肪酸为C18∶2(59.4%)、C16∶0(21.5%)、C18∶1(9.8%)。
从线粒体制剂中发现两种质粒样DNA成分：pLPO1、pLPO2，它们的5′末端被蛋白质封闭，蛋白酶K对它们的5′末端蛋白的分解程度不同，说明其末端蛋白不同，二者之间及与线粒体、核中染色体之间无同源性〔18〕。
通过凝胶过滤、标记致敏原吸收实验发现PO中含有致敏活性物质〔19〕。对PO孢子用乙醚脱脂，然后用0.125 mol/L碳酸氢铵缓冲液提取，致敏原收率最高。
2 药理作用
, 百拇医药
2.1 抗肿瘤作用：实验表明，PO子实体的水提液对小鼠肉瘤抑制率为75%、对艾氏瘤抑制率为60%。从PO热水提取物中分离出葡聚糖组分，在0.1 mg/kg时表现出很强的抗肿瘤作用〔20〕。从PO提取得到糖肽，体内对S180肉瘤有明显抑制作用，可诱导和促进LAK、NK细胞对肿瘤细胞的杀伤作用〔21〕。还得到一对热极不稳定的碱性糖蛋白，体外对S180腹水瘤细胞有很强的细胞毒作用，可使瘤细胞膜通透性发生改变，导致细胞溶解。体内对S180小鼠效果也很好〔22〕。
2.2 抗氧化作用：PO水提物具有清除羟基自由基的作用，这可能与其菌体内几丁质(chitin)含量较高有关。用含5%PO干粉的食物喂饲大鼠10周后，其血液、肝脏中H2O2浓度明显降低，肝脏抑制自由基产生的能力提高了24%，抗过氧化物酶，特别是超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶的活性有显著提高〔23〕。
, 百拇医药
2.3 降低胆固醇作用：叙利亚雌性大鼠慢性吸入酒精8周后，胆固醇(C)、甘油三酯(TG)和磷脂含量升高，若同时喂饲PO食物，可使大鼠体内C的水平降至未接受酒精吸入大鼠的水平以下，血液中TG和极低密度脂蛋白(VLDL)下降30%，而高密度脂蛋白(HDL)的含量、组成未受影响〔24〕。
用含1% PO的食物喂饲对外源胆固醇有遗传敏感性的雌性大鼠，4周后，与不喂饲PO的对照组相比，血液中C的含量降低了40%。
用PO喂饲断奶不久的雄性Wistar大鼠，8周后，血液、肝脏中C的含量分别下降33%、27%，血液中TG不受影响，肝脏中TG含量降低41%。实验表明，C的降低主要是LDL、VLDL中C的减少，HDL中的C并不受影响。由双同位素血浆比率法发现PO可使C的吸收降低14%，从14C-胆固醇的衰变曲线分析，PO能使C的代谢增加42%〔25〕。
, 百拇医药
从PO中得到水及30%、60%、85%乙醇的提取物，喂饲Hamster鼠，6周后发现，水及30%、60%醇提取物可显著降低血液中C、TG含量，肝脏中C、TG下降34%～40%，85%醇提取物使肝脏中C、TG下降18%～22%〔26〕。
实验表明，PO多糖亦可降低小鼠血液、肝脏中C的含量。
2.4 免疫促进作用：小鼠皮下注射不同剂量的PO葡聚糖(glucan)和果聚糖(levamiso-
le)，结果显示，葡聚糖在10 mg/kg时，可明显增强小鼠对二硝基氟苯的迟发性超敏反应(DHR)(P<0.05)，对吞噬细胞活性指数和中性粒细胞活性都有促进作用(P<0.05)；果聚糖在20 mg/kg时，可促进DHR和吞噬细胞的吞噬活性〔27〕。
2.5 其它：用含PO的高C食物喂饲胰岛素依赖性糖尿病模型大鼠，2周后，其基础血糖和进食后的血糖水平均明显降低〔28〕。
, 百拇医药
由PO子实体制成的“舒筋散”可治腰腿疼痛、手足麻木、筋络不适。
雌性大鼠用缺Se食物喂食4周，造成缺Se模型，然后分别喂饲含亚硒酸钠和PO的食物，3周后，两组动物血液、肝脏中Se的水平均明显增加。以亚硒酸钠作基准，PO中Se的相对生物利用度为：血液66.66%，肝脏125%。谷胱甘肽过氧化物酶的活性是123.42%〔29〕。
用含2%PO的饲料喂饲Hamster鼠，可显著控制其体内Zn、Mg、Fe的平衡。
糙皮侧耳真菌在我国栽培广泛，资源十分丰富，深入对其进行研究开发，无论从经济价值还是从药用价值方面都具有重大意义。
*Address:Jiang Zibin,The Institute for Drug Control of Jinan Military Region,Jinan
, 百拇医药
作者简介:姜自彬 男,1986年就读于山东医科大学药学系本科,1990年毕业分配到济南军区药检所仪器室工作,1994年考入山东医科大学硕士研究生班攻读生化药学专业,1997年毕业回到济南军区药检所理化室.已发表论文数篇.
参 考 文 献
[1] Vetter J. Z Lebensm-Vnter Forsh,1989，189(4):346
[2] Strmiskova G,et al.Potravin Vedy,1990，8(2):149
[3] JP 07 238091(95 238091)
[4] Butovich I A,et al.UKr Bopkhim Zh,1986，58(4):18
, http://www.100md.com
[5] Kim Y R,et al.J Biol Chem,1996，271(16):3105
[6] Kim S T,et al.Misaengmul Hakhoechi,1994，32(4):315
[7] Nomura H,et al.J Biochem,1994，116(1):26
[]8 Magae Y.J Gem Microbiol,1993，139(1):165
[9] Vyas B R,et al.Appl Environ Microbiol,1995，61(11):3919
[10] Youn H D,et al.Microbiology,1995，141(Pt2):393
, http://www.100md.com
[11] Shin K S,et al.Eur J Biochem,1993，215(3):747
[12] Sannia G,et al.Bichim Biophys Acta,1991，1073(1):114
[13] Gunde C N,et al.FEMS Microbiol Lett,1993，113(3):333
[14] Dohmae N,et al.Arch Biochem Biophys,1995，316(1):498
[15] Cinrad F,et al.Phytochemistry,1994，35(2):277
[16] Hranisalvljevic J M,et al.J Serb Chem Soc,1988，53(4):225
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[17] Karacsinyi S,et al.Carbohydr Polym,1994，24(2):107
[18] Yui Y,et al.Biochim Biophys Acta,1988，951(1):53
[19] Horner W E,et al.J Allergy Clin Immunol,1988，82(6):978
[20] Yoshika Y,et al.Carbohydr Res,1985，140(1):93
[21] 李 华，等.药物生物技术，1994，1(1)：35
[22] 李 华，等.山东医科大学学报，1993，31(3)：255
[23] Bobek P,et al.Pharmazie,1995，50(6):44
, 百拇医药
[24] Bobek P,et al.Physiol Res,1991，40(3):327
[25] Bobek P,et al.Z Ernahrungswiss,1994，33(1):44
[26] Bobek P,et al.Nahrung,1993，37(6):571
[27] Paulik S,et al.Vet Med Phar,1992，37(12):625
[28] Chorvathora V,et al.Physiol Res,1993，42(6):175
[29] Sun Q,et al.Yingyang Xuebao,1993，15(4):426
(1998-03-13收稿 1998-04-29修回), 百拇医药
单位：姜自彬 魏学彦济南军区药检所(济南250022)；曹锦花 山东医科大学生化制药教研究室
关键词：糙皮侧耳；化学成分；药理作用
中草药/990132 摘 要 糙皮侧耳是民间常用食用菌，含多种氨基酸、多肽、酶及其抑制剂、凝集素和多糖等，具有抗肿瘤、抗氧化、促进免疫及降胆固醇等多种作用，值得深入研究。
糙皮侧耳Pleurotus ostreatus(Jacq.ex Fr.)Quél(简称PO)系担子菌纲口蘑科真菌，别名平菇、北风菌、青蘑、桐子菌、粗皮侧耳等，是民间常用食用菌，营养价值较高，同时具有一定的药用价值。为便于对其进行深入的开发研究，现对近年来其化学成分、药理作用等方面的进展情况进行综述。
1 化学成分
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1.1 无机元素：通过比较侧耳菌与落叶松蕈Agaricus中无机元素的含量，发现As不在PO中聚集，PO中K、P含量低于落叶松蕈〔1〕。测定了PO中的无机元素，含量较高的为：K、P、Ca，含量较少的有：Fe、Zn、Cu、Mn、V，重金属有Cd、Hg〔2〕。
1.2 氨基酸：对子实体中游离氨基酸进行分析，除N-Δ-乙酰-L-鸟氨酸外，还检测到33种氨基酸，其中丙氨酸、谷氨酸、鸟氨酸中氮的含量占全部游离氨基酸的40%。
1.3 多肽：由子实体中得到一种对食欲有抑制作用的糖肽，分子量为70 000～90 000，pI为8.2～9.2，含有2.2%～3.0%的多糖〔3〕。
1.4 酶：从培养液中得到苯酚氧化酶(phenol oxidase)，可氧化间、对、邻位具有不同取代基的苯酚，底物取代基方向不同，氧化机制也不一样，疏电子基团阻碍底物氧化，释电子基团可促进底物氧化〔4〕。
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由菌丝体中分离出抗坏血酸氧化酶，总产率为13%，分子量为94 000，SDS-PAGE显示该酶由两个46 000的亚基组成。在37℃和pH 5.2时活性最佳，对L-抗坏血酸的Km是0.48 mmol/L。氰化物和CO处理后的光谱改变表明该酶为血色素蛋白，每摩尔酶含2 mol血色素〔5〕。
从PO中得到产率为21.4%的酶glyoxalase Ⅰ，分子量为34 000，SDS-PAGE显示由两个相同的17 000的亚基组成，1H-NMR分析该酶可催化分子内的质子转移〔6〕。
从子实体中分离出属于RNase T1家族的guanylic acid特异性RNase，在pH 8.0时活性最强，热稳定性比RNase T1强，该酶含有101个氨基酸，其中6个为半胱氨酸。其分子量为10 800，在二硫键的位置和稳定性方面，与RNase T1家族中其它成员不同〔7〕。
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从菌丝体中纯化出蛋白激酶C，SDS-PAGE测得分子量为68 000〔8〕。
从PO中发现一种需H2O2的对Renazol亮蓝R脱色的酶，该酶在pH 3.5～4.0时活性最大，其活性可被Na2S2O5、NaCl、半胱氨酸抑制，H2O2浓度大于154 mmol/L时也能抑制其活性〔9〕。
PO提取液经PAGE发现两条具有漆酶(laccase)活性的色带，为单聚体，分子量为64 000。该酶含有两个极性基团，pK值分别为5.60～5.70、6.70～6.85，这两个基团对维持其活性有重要作用〔10〕。
从PO中纯化得到总产率为23.8%的D-葡萄糖氧化酶(D-glucose oxidase)，分子量为290 000，SDS-PAGE显示该酶含有4个70 000的亚基。其辅基是核黄素(flavin)，在50 ℃、pH 5.5～6.0时活性最佳，对D-葡萄糖的Km值是1.34 mmol/L，其活性可被HgCl2完全抑制〔11〕。
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从培养液中得到藜芦醇氧化酶(VAO)，为糖蛋白，以FAD为辅基。4位有甲氧取代基的芳香醇是其较好的底物，肉桂醇可被VAO迅速氧化，松柏醇则氧化较慢。该酶表观熔点60 ℃，对热中度稳定〔12〕。
1.5 酶抑制剂：用从Hamster鼠的卵细胞得到的3-羟基-3-甲基戊二酰基(HMG)CoA还原酶，发现PO中存在HMG CoA还原酶抑制剂mevinolin，并用TLC、HPLC和MS进一步证实〔13〕。后又发现抑制剂lovastatin在子实体形成期间出现，可在营养菌丝体、原基和子实体的不同部分测得。
从子实体中纯化出特异性的血清蛋白酶的抑制剂IA-1、IA-2，分子量为8 300、8 200。二者均为酸性多肽，各含72个氨基酸，其N-末端氨基酸被乙酰化封闭。IA-1的12，15位为天冬氨酸和谷氨酸，IA-2则为甘氨酸和天冬氨酸。用羧肽酶Y对IA-1处理则完全失去抑制活性，用HBr使IA-1的Met39-Pro40和Met41-Lys42断裂，用羟胺使IA-2降解，则二者均无活性，说明整个抑制剂分子都参与了活性的发挥〔14〕。
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1.6 凝集素(agglutinin)：从子实体中纯化出一种凝集素，可与一种磷酸酶相互作用而增强其活性，该凝集素的这种性质可被半乳糖阻断，表明与磷酸酶的反应是在凝集素的活性位点进行的〔15〕。
1.7 多糖：从PO中得到含D-半乳糖、D-甘露糖、L-果糖的杂聚糖，其基本骨架是(1→6)-D-半乳糖多聚体，此多糖含大量的D-甘露吡喃糖，并通过O-3和O-2与主链相连，该糖的构型是α-D型〔16〕。
由子实体中得到不溶于碱的β-D-葡聚糖，含有1→3连接的β-D-吡喃葡萄糖片断。该糖含7%的蛋白质，可延长易受细菌感染的小鼠的存活期〔17〕。
1.8 其它：对培养基中细胞外维生素作了研究，发现PO不能合成Vit B12，培养基的pH和组成明显影响菌丝体中Vit B1、B5、B7的含量，对B2、B6影响较小，在指数生长后期，B5、B7特别是B6分泌较多，B1、B2只存在于细胞中。
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用色谱法鉴定了8～20个碳原子的脂肪酸，其中大部分是不饱和脂肪酸，油酸含量最高，为56%。用毛细管气相色谱法检测了PO中总的脂肪酸，主要脂肪酸为C18∶2(59.4%)、C16∶0(21.5%)、C18∶1(9.8%)。
从线粒体制剂中发现两种质粒样DNA成分：pLPO1、pLPO2，它们的5′末端被蛋白质封闭，蛋白酶K对它们的5′末端蛋白的分解程度不同，说明其末端蛋白不同，二者之间及与线粒体、核中染色体之间无同源性〔18〕。
通过凝胶过滤、标记致敏原吸收实验发现PO中含有致敏活性物质〔19〕。对PO孢子用乙醚脱脂，然后用0.125 mol/L碳酸氢铵缓冲液提取，致敏原收率最高。
2 药理作用
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2.1 抗肿瘤作用：实验表明，PO子实体的水提液对小鼠肉瘤抑制率为75%、对艾氏瘤抑制率为60%。从PO热水提取物中分离出葡聚糖组分，在0.1 mg/kg时表现出很强的抗肿瘤作用〔20〕。从PO提取得到糖肽，体内对S180肉瘤有明显抑制作用，可诱导和促进LAK、NK细胞对肿瘤细胞的杀伤作用〔21〕。还得到一对热极不稳定的碱性糖蛋白，体外对S180腹水瘤细胞有很强的细胞毒作用，可使瘤细胞膜通透性发生改变，导致细胞溶解。体内对S180小鼠效果也很好〔22〕。
2.2 抗氧化作用：PO水提物具有清除羟基自由基的作用，这可能与其菌体内几丁质(chitin)含量较高有关。用含5%PO干粉的食物喂饲大鼠10周后，其血液、肝脏中H2O2浓度明显降低，肝脏抑制自由基产生的能力提高了24%，抗过氧化物酶，特别是超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶的活性有显著提高〔23〕。
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2.3 降低胆固醇作用：叙利亚雌性大鼠慢性吸入酒精8周后，胆固醇(C)、甘油三酯(TG)和磷脂含量升高，若同时喂饲PO食物，可使大鼠体内C的水平降至未接受酒精吸入大鼠的水平以下，血液中TG和极低密度脂蛋白(VLDL)下降30%，而高密度脂蛋白(HDL)的含量、组成未受影响〔24〕。
用含1% PO的食物喂饲对外源胆固醇有遗传敏感性的雌性大鼠，4周后，与不喂饲PO的对照组相比，血液中C的含量降低了40%。
用PO喂饲断奶不久的雄性Wistar大鼠，8周后，血液、肝脏中C的含量分别下降33%、27%，血液中TG不受影响，肝脏中TG含量降低41%。实验表明，C的降低主要是LDL、VLDL中C的减少，HDL中的C并不受影响。由双同位素血浆比率法发现PO可使C的吸收降低14%，从14C-胆固醇的衰变曲线分析，PO能使C的代谢增加42%〔25〕。
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从PO中得到水及30%、60%、85%乙醇的提取物，喂饲Hamster鼠，6周后发现，水及30%、60%醇提取物可显著降低血液中C、TG含量，肝脏中C、TG下降34%～40%，85%醇提取物使肝脏中C、TG下降18%～22%〔26〕。
实验表明，PO多糖亦可降低小鼠血液、肝脏中C的含量。
2.4 免疫促进作用：小鼠皮下注射不同剂量的PO葡聚糖(glucan)和果聚糖(levamiso-
le)，结果显示，葡聚糖在10 mg/kg时，可明显增强小鼠对二硝基氟苯的迟发性超敏反应(DHR)(P<0.05)，对吞噬细胞活性指数和中性粒细胞活性都有促进作用(P<0.05)；果聚糖在20 mg/kg时，可促进DHR和吞噬细胞的吞噬活性〔27〕。
2.5 其它：用含PO的高C食物喂饲胰岛素依赖性糖尿病模型大鼠，2周后，其基础血糖和进食后的血糖水平均明显降低〔28〕。
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由PO子实体制成的“舒筋散”可治腰腿疼痛、手足麻木、筋络不适。
雌性大鼠用缺Se食物喂食4周，造成缺Se模型，然后分别喂饲含亚硒酸钠和PO的食物，3周后，两组动物血液、肝脏中Se的水平均明显增加。以亚硒酸钠作基准，PO中Se的相对生物利用度为：血液66.66%，肝脏125%。谷胱甘肽过氧化物酶的活性是123.42%〔29〕。
用含2%PO的饲料喂饲Hamster鼠，可显著控制其体内Zn、Mg、Fe的平衡。
糙皮侧耳真菌在我国栽培广泛，资源十分丰富，深入对其进行研究开发，无论从经济价值还是从药用价值方面都具有重大意义。
*Address:Jiang Zibin,The Institute for Drug Control of Jinan Military Region,Jinan
, 百拇医药
作者简介:姜自彬 男,1986年就读于山东医科大学药学系本科,1990年毕业分配到济南军区药检所仪器室工作,1994年考入山东医科大学硕士研究生班攻读生化药学专业,1997年毕业回到济南军区药检所理化室.已发表论文数篇.
参 考 文 献
[1] Vetter J. Z Lebensm-Vnter Forsh,1989，189(4):346
[2] Strmiskova G,et al.Potravin Vedy,1990，8(2):149
[3] JP 07 238091(95 238091)
[4] Butovich I A,et al.UKr Bopkhim Zh,1986，58(4):18
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[5] Kim Y R,et al.J Biol Chem,1996，271(16):3105
[6] Kim S T,et al.Misaengmul Hakhoechi,1994，32(4):315
[7] Nomura H,et al.J Biochem,1994，116(1):26
[]8 Magae Y.J Gem Microbiol,1993，139(1):165
[9] Vyas B R,et al.Appl Environ Microbiol,1995，61(11):3919
[10] Youn H D,et al.Microbiology,1995，141(Pt2):393
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[11] Shin K S,et al.Eur J Biochem,1993，215(3):747
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(1998-03-13收稿 1998-04-29修回), 百拇医药