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编号:12080403
富含血小板血浆双相接种法构建组织工程骨(2)
http://www.100md.com 2011年3月1日 雷华,肖苒,曹蕊,吕晓岩,归来
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    参见附件(4703KB,6页)。

     诱导7天后,用CAKP试剂盒(中国南京建成生物工程研究所)进行ALP染色。成骨细胞胞质中可见红或棕色ALP阳性颗粒。诱导14天后,用茜素红(中国阿拉丁试剂有限公司)进行钙结节染色。钙化结节呈现不同的红色。

    1.4 PRP和PPP的制备:中国青山羊一只,5月,10kg。速眠新1.5ml肌肉注射麻醉。50ml注射器内含5mlACD(0.48g柠檬酸,1.32g柠檬酸钠,1.47g葡萄糖溶于100ml双蒸水),于颈静脉抽取全血40ml,离心1 000g,15min,取上层血浆二次离心,3 000g,20min。上层为清亮的PPP,移入另一5ml离心管中备用。中间层为白色的血小板团轻用吸管吸出移至另一离心管中。用少量PPP将血小板团重悬,人工血小板计数,调节成浓度为106/μl 的PRP备用[14-16]。PPP中血小板浓度104/μl。

    1.5 PLGA支架预处理:PLGA支架由济南岱罡生物科技有限公司提供。PLA:PGA=75:25。孔径大小100~300μm,空隙率80%。将大块PLGA切成5mm×5mm×3mm小立方体,供体外研究使用。PLGA立方体浸泡于75%酒精中消毒24h,PBS漂洗3次,DMEM孵育30min,取出至于无菌纱布上,吸干大部分水分。

    1.6 三种接种方法构建细胞/支架复合体:方法一,为传统静置接种法,即DMEM重悬细胞,调节细胞密度至5×106/ml。滴加80μl细胞悬液/支架,37℃,5% CO2,孵育2h,移入六孔板,每孔5ml诱导培养基。方法二,PPP重悬细胞,调节细胞密度至5×106/ml。滴加80μl细胞悬液/支架,随即滴加30μl凝血酶溶液(10 000IU凝血酶(Sigma,USA)加入10%CaCl2(Sigma,China)中),加盖,37℃,5% CO2,孵育30min,移入六孔板,每孔5ml诱导培养基。方法三,PRP重悬细胞,其余同方法二。每3天换一次液。接种后24h 倒置显微镜下观察。

    1.7 细胞/支架复合体电镜扫描:细胞/支架复合体培养3天、7天后,2.5%戊二醛固定,30%~100%的梯度乙醇脱水,真空干燥,表面喷金处理后在扫描电镜下观察照相。

    1.8 细胞/支架复合体DNA定量分析:分别于1天、5天、9天、14天每组取4个细胞/支架复合体,PBS漂洗两次,放入7ml离心管中,剪成小块,加1ml骨细胞消化液[11,13],37℃水浴2h。将消化混合液吸入另一个7ml离心管,超声细胞破碎机处理5次,6s/次,共30s,离心200g,5min,取上清液待用。

    上清液40μl置于96孔黑色不透光酶标板内,每个样本两个副孔,每孔加160μl Hoechst 33258(Sigma,USA)测试液(1μg/ml),放入荧光酶标仪样品槽,震荡混匀30s,选择激发波长360nm,发射波长460nm,测定样品的荧光强度。以小牛胸腺DNA(Sigma USA)做标准曲线。实验重复3次。

    1.9 细胞/支架复合体ALP活性定量分析:取方法8中的上清液,用碱性磷酸酶试剂盒(中国南京建成生物工程研究所)测定ALP活性。50μl上清液加500μl缓冲液、500μl基质液,充分混合,37℃水浴3h。分光光度计520nm测定吸光度。吸光度的OD值代表复合体的ALP活性。实验重复3次。

    1.10 细胞/支架复合体成骨基因相对定量分析:每个复合体置入2ml Eppendorf 管中,加入1mlTrizol(Invitrogen,USA),剪碎复合体, 4℃放置1h,待复合体完全溶解于Trizol,提取总RNA。根据反转录试剂盒(ABI,USA)提供的实验步骤,反转录合成cDNA。各引物均由北京基莱生物科技有限公司合成。实时定量PCR反应体系为25μl,ABI7900HT定量PCR仪(ABI,USA)的反应程序:50℃ 2min→95℃ 10min →(95℃ 15s → 60℃ 1min)×40个循环→95℃ 15s→ 60℃ 1min→95℃ 15s---20℃终止反应。管家基因GAPDH作为内对照,每个样本设置3个复孔。管家基因和目的基因的引物核苷酸序列,产物大小,退火温度总结于表1。 对于每一个样本CT 值是PCR产物达到可探测的荧光强度时复制循环次数。用2-△△CT方法计算每个目的基因每个时间点的现对表达水平。对于每一个目的基因,△△CT=(CT,目的基因-CT,管家基因)Time x-标准△CT,标准△CT为DMEM组(CT,目的基因t-CT,管家基因)Time 0[17]。

    1.11 每个数值以平均值±标准差表示,组间比较用单因素方差分析(one-way ANOVA)及Tukey's test。设P<0.05具有统计学显著差异性。表1。

    2结果

    2.1 BMSCs成骨诱导培养:BMSCs诱导培养7天后,ALP染色为阳性,诱导14天后,茜素红染色为阳性。说明本实验条件下,自山羊骨髓中可分离培养出骨髓基质细胞,经诱导后,可向成骨细胞分化(图1)。

    2.2 三种接种方法接种效率比较:细胞接种后24h,光学显微镜下观察,DMEM组的六孔板底以复合体为中心布满贴壁的BMSCs,PRP组六孔板底以复合体为中心布满血小板,PPP组六孔板底清洁,偶见单个细胞(图2)。

    扫描电镜观察显示,DMEM组支架表面粘附的细胞明显较PPP和PRP组少,PPP和PRP组支架表面不仅粘附大量细胞还有胶原纤维附着。7天时,PPP和PRP组支架表面的细胞呈现伸展平铺状态(图3A、B)。

    细胞接种后24h,细胞/支架复合体内DNA检测显示,DMEM组的DNA含量显著低于PPP和PRP组(P<0.05),而PPP和PRP组的DNA含量无差别(图4)。

    2.3 BMSCs/PLGA复合体内BMSCs增殖比较:复合体中DNA的含量代表BMSCs的数量,DNA的增加表示BMSCs的增殖,数据如图4所示。在DMEM组中,从接种后1~9天,BMSCs快速增殖(P<0.05),但从9~14天,BMSCs增殖进入平台期(P>0.05)。PRP组中的BMSCs显示了同样的趋势。但PRP组中的BMSCs自接种后1~14天,一直显著增殖(P<0.05)。5天,9天,14天PRP组的BMSCs显著高于其他两组(P<0 ......

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