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编号:12179140
表没食子儿茶素没食子酸酯对Hela细胞的诱导凋亡作用及靶点蛋白质研究(2)
http://www.100md.com 2012年1月1日 周晓 王晔恺 周吉航 曾芳 周世权 黄燕燕 刘晓光
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    参见附件。

     2.3Annexin V/PI标记法检测凋亡

    将2.1中细胞吸出培养液,预冷PBS洗涤弃上清,残渣细胞收集至流式管。每管加10μL Annexin V和5μL PI,避光静置15min,加300μL预冷的PBS,振荡混匀上机。

    2.4倒置显微镜下观察细胞凋亡形态

    取2.3中细胞沉淀涂片,在荧光显微镜下观察各实验组的细胞形态。

    2.5微球吸附法检测EGCG靶点蛋白

    2.5.1微球制备取10mL的微球装入砂滤漏斗,用100mL蒸馏水洗3次,然后用50mL 1mol/L Na2CO3缓冲液(pH 11.0)清洗2遍。加10mL 1mol/L Na2CO3缓冲液(pH 11.0),将微球转移至250mL烧杯。取1g溴化腈,用1mL乙腈溶解,加至上步的微球中,室温反应10min。将微球转移至砂滤漏斗,10倍柱体积的1× PBS洗涤,转移至50mL离心管。

    2.5.2EGCG偶联到固相介质EGCG配成5g/L,加至上步的离心管中,冰上反应3h,转移至砂滤漏斗,1× PBS洗涤10次,转移至50mL离心管,4℃保存备用。

    2.5.3Hela细胞裂解液制备Hela细胞用预冷(4℃)的1× PBS清洗2次,加细胞裂解液10mL(RIPA和PMSF比例为100∶1),枪头吹打细胞,收集至50mL离心管,4℃放置30min,12000r/min离心10min,吸上清,调整蛋白浓度约为10 g/L。

    2.5.4EGCG微球吸附靶蛋白将Hela细胞裂解液与偶联EGCG微球孵育,4℃过夜,再将微球转移至砂滤漏斗,1× PBS洗涤5次,取200μL微球加200μL 2×SDS溶液,94℃煮3min,离心,取上清SDS-PAGE电泳,以未偶联有EGCG的微球与Hela细胞裂解液孵育洗脱后的离心上清液作为阴性对照。

    2.5.5SDS-PAGE胶考马斯亮染染色用刀轻轻分开玻璃板,用染色液染色过夜,再用脱色液将背景脱至干净,用ddH2O将凝胶洗2次,每次2min,凝胶成像仪扫描。

    2.5.6质谱鉴定切下胶上目标条带,以空胶块作对照。50μL 30 mmol/L K3Fe(CN)6 和100 mmol/L Na2S203以体积比1∶1加入胶块内,脱色2次,再加入100μL 100 mmol/L NH4HCO3,脱水冻干。冻干后,各加入5μL 0.01g/L胰蛋白酶溶液,置于4℃冰箱30~60min,使胶块充分吸胀,加入25μL 50mmol/L NH4HCOs缓冲液,37℃酶解过夜,吸出酶解液,转移至新EP管中,原管加入100μL抽提液(60%乙腈、0.1%三氟乙酸、40%超纯水),超声15 min,反复抽提3次,合并后冻干。润湿C18介质后,平衡Zip Tip枪头,捆绑肽段或蛋白质,洗去盐分和残留物,点样后进行LTQ ESI质谱检测。采用IPI上人的非冗余蛋白数据库,SE QUEST2过滤参数设置:当Charge+1,x corr≥1.9,当Charge+2,x corr≥2.2,当Charge+1,X corr≥3.75,其中Del CN≥0.1,单向电泳和质谱鉴定由中国科学院生物物理研究所协助完成。

    2.6 Hela细胞肌动蛋白聚合体(F-actin)

    鬼笔环肽染色 Hela细胞爬片生长24h,与加终浓度50、100、200、400μg/mL梯度组浓度的EGCG溶液各200μL,作用24h和48h,预温PBS(37℃)清洗细胞2次,4%多聚甲醛室温固定7min,PBS清洗细胞3次,5μg/mL鬼笔环肽工作液室温染色50min,PBS清洗3次,吸去多余水分,加荧光封片液封片,荧光显微镜下观察。

    2.7统计学分析

    固定药物浓度后不同药物作用时间组之间的MTT抑制率、流式凋亡百分比比较采用独立t检验,固定药物作用时间后不同药物浓度组间MTT抑制率、流式凋亡百分比比较均采用单因素方差分析和LSD两两检验(只检验两两之间差异),以P<0.05为具有显著统计学意义。

    3结 果

    3.1MTT检测生长抑制率

    见图1,终浓度50、100、200、400μg/mL梯度组浓度的EGCG溶液处理Hela细胞24h其生长抑制率分别为22.5%±4.3%、33.4%±5.9%、48.4%±6.1%、58.8%±8.8%,处理48h其生长抑制率分别为37.8%±5.6%、53.9%±7.2%、69.4%±7.1%、73.6%±8.9%。24h作用时间,50和100、100和200μg/mL之间抑制率差异存在显著统计学意义(P<0.05)。48h作用时间,50和100、200和400μg/mL之间抑制率差异存在显著统计学意义(P<0.05,P<0.05)。50μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-5.30,P<0.01),100μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-5.39,P<0.01),200μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-5.49,P<0.01),400μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-2.90,P<0.05)。

    3.2 Annexin V/PI标记法检测凋亡

    见表1、图2,固定作用时间组,24h的EGCG的50组、200组、400μg/mL组和前一浓度组相比,差异均具有显著统计学意义(P<0.01),48h的EGCG的50组、100组、200μg/mL组和前一浓度组相比,差异均具有显著统计学意义(P<0.01,P<0.01,P<0.05)。50μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-3.45,P<0.01),100μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-6.53,P<0.01),200μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-5.43,P<0.01),400μg/mL组24h和48h间抑制率差异具有显著统计学意义(t=-3.32,P<0.01)。

    3.3 显微镜下观察Hela细胞凋亡形态

    见插页Ⅴ图3,用药后细胞生长受到抑制,细胞体积缩小变圆 ......

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